建立共培养模型
验证MECs是否能吞噬髓鞘碎片
将MECs接种于基质胶包被的爬片上形成血管样结构,与CFSE标记的髓鞘碎片共培养。
Inhibition of HDAC6 promotes microvascular endothelial cells to phagocytize myelin debris and reduces inflammatory response to accelerate the repair of spinal cord injury.
包含体外细胞共培养模型、动物SCI模型、免疫荧光、Western blot、Co-IP、ELISA等多层级实验,并进行了功能验证和机制探讨。
小鼠脑微血管内皮细胞(BEND3) 小鼠单核巨噬细胞白血病细胞(RAW264.7) C57BL/6小鼠脊髓损伤模型
Tubastatin-A给药剂量(50 mg/kg/day,腹腔注射) Tubastatin-A细胞处理浓度(40 μM) Baf-A1浓度(50 nM) 共培养时间(72小时) C57BL/6小鼠周龄(6-8周)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证MECs是否能吞噬髓鞘碎片
将MECs接种于基质胶包被的爬片上形成血管样结构,与CFSE标记的髓鞘碎片共培养。
检测MECs吞噬髓鞘碎片后炎症因子的分泌
通过ELISA检测共培养上清中IL-1β、IL-6、MCP-1、TNF-α水平,并通过Transwell实验检测巨噬细胞募集。
确定IgM或IgG在MECs吞噬髓鞘碎片中的作用及对炎症因子的影响
设计无血清组和IgG灭活组,补充不同浓度的IgM或IgG,通过免疫荧光、流式、ELISA检测吞噬效率和MCP-1水平。
评估Tubastatin-A对MECs吞噬效率和炎症分泌的影响
在共培养系统中加入Tubastatin-A,检测吞噬效率、炎症因子水平和巨噬细胞募集。
探究Tubastatin-A对B细胞增殖和分化的影响
从小鼠脾脏分离B细胞,用Tubastatin-A干预,通过流式检测B细胞向浆细胞分化,ELISA检测IgG和IgM水平。
验证HDAC6调节自噬-溶酶体通路促进吞噬的机制
使用Tubastatin-A和Baf-A1干预共培养系统,通过免疫荧光、透射电镜、Western blot和Co-IP检测自噬相关蛋白表达和自噬体-溶酶体融合。
在SCI小鼠模型中验证Tubastatin-A的疗效和机制
建立SCI模型,腹腔注射Tubastatin-A,通过HE、Nissl染色、ELISA、流式、免疫荧光等检测病理变化、炎症因子、免疫球蛋白和相关蛋白表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 药物处理 | Tubastatin-A | Yuanye | S80226 |
| 巴弗洛霉素A1 | Abcam | ab120497 | |
| Transwell实验 | 结晶紫染色试剂盒 | Beyotime | C0121 |
| 组织染色 | HE染色试剂盒 | Servicebio | G1005 |
| 尼氏染色试剂盒 | Servicebio | G1036 | |
| 透射电镜 | 电镜固定液 | Servicebio | G1102 |
| 透射电子显微镜 | Hitachi | SU8100 | |
| ELISA | 小鼠IL-1β ELISA试剂盒 | mlbio | ml301814 |
| IL-6 ELISA试剂盒 | mlbio | ml063160 | |
| IL-10 ELISA试剂盒 | mlbio | ml037873 | |
| MCP-1 ELISA试剂盒 | mlbio | ml037840 | |
| IgG ELISA试剂盒 | mlbio | ml037601 | |
| IgM ELISA试剂盒 | mlbio | ml063597 | |
| TNF-α ELISA试剂盒 | mlbio | ml002095 | |
| C3 ELISA试剂盒 | mlbio | ml002033 | |
| MBP ELISA试剂盒 | Jin Yibai | JEB-12718 | |
| 免疫荧光 | CD31抗体 | Affinity | AF6191 |
| HDAC6抗体 | Proteintech | 12834-1-AP | |
| MBP抗体 | Proteintech | 15089-1-AP | |
| LC3B抗体 | Proteintech | 18725-1-AP | |
| NLRP3抗体 | Bioss | bs-6655R | |
| CD11b抗体 | Bioss | bs-1014R | |
| GFAP抗体 | CST | 3670 | |
| Alexa-488二抗 | Abcam | ab150077 | |
| Alexa-594二抗 | Abcam | ab150080 | |
| FITC二抗 | Servicebio | GB22303 | |
| Cy3二抗 | Servicebio | GB21303 | |
| Cy5二抗 | Servicebio | GB273030 | |
| TSA Plus试剂盒 | Servicebio | G1236 | |
| 流式分选 | 淋巴细胞分离试剂盒 | Solarbio | P8860 |
| CD19磁珠 | Miltenyi | 130-121301 | |
| Fc受体阻断剂 | Miltenyi | 130-09257575 | |
| CD19-APC抗体 | BD | 550992 | |
| CD138-PE抗体 | Biolegend | 142504 | |
| Western blot | RIPA裂解液 | -- | -- |
| 预制胶 | ACE | F15420Gel | |
| PVDF膜 | -- | -- | |
| 乙酰化α-微管蛋白抗体 | CST | 5335S | |
| α-微管蛋白抗体 | Proteintech | 11224-1-AP | |
| Kinesin-5抗体 | Abcam | ab167429 | |
| p62抗体 | Proteintech | 18420-1-AP | |
| p-ULK1抗体 | Proteintech | 80218-1-RR | |
| ULK1抗体 | Proteintech | 20986-1-AP | |
| Beclin1抗体 | Proteintech | 11306-1-AP | |
| IL-1β抗体 | Affinity | AF5103 | |
| IL-6抗体 | Affinity | DF6087 | |
| TNF-α抗体 | Proteintech | 60291-1-Ig | |
| GAPDH抗体 | Proteintech | 60004-1-Ig | |
| β-actin抗体 | Proteintech | 66009-1-Ig | |
| Syntaxin17抗体 | Proteintech | 17815-1-AP | |
| VAMP8抗体 | Proteintech | 15546-1-AP | |
| 山羊抗兔HRP二抗 | Affinity | S0001 | |
| 山羊抗小鼠HRP二抗 | Affinity | S0002 | |
| Co-IP | rProtein A/G磁珠免疫共沉淀试剂盒 | ACE | AM001-01 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 细胞系(BEND3、RAW264.7)、培养基(DMEM高糖)、血清浓度(10% FBS)、双抗(1% P/S) 阅读提示:Methods 2.2 |
| 共培养模型 | MECs接种密度(1×10^5/孔)、基质胶包被、髓鞘碎片浓度(1 mg/mL)、共培养时间(72小时) 阅读提示:Methods 2.5 |
| 药物干预 | Tubastatin-A浓度(40 μM)、Baf-A1浓度(50 nM)、处理时间(72小时) 阅读提示:Methods 2.6 |
| 动物模型 | 小鼠品系(C57BL/6)、周龄(6-8周)、性别(雌性)、SCI造模方法(改良Allen法)、Tubastatin-A剂量(50 mg/kg/day)、给药方式(腹腔注射) 阅读提示:Methods 2.1, 2.3, 2.6 |
| 流式检测B细胞 | 脾脏来源、CD19磁珠分选、Fc受体阻断、CD19-APC和CD138-PE抗体用量(各1 μL)、孵育条件(4°C 30分钟) 阅读提示:Methods 2.12 |