PFN2a通过p53通路抑制增殖并促进凋亡从而抑制C2C12成肌发育

PFN2a Suppresses C2C12 Myogenic Development by Inhibiting Proliferation and Promoting Apoptosis via the p53 Pathway.

作者信息Huaqin Li, Lianjie Hou, Yu Zhang, Fangyi Jiang, Yifan Zhu, Qing X Li, Ching Yuan Hu, Chong Wang
PMID31450751
期刊Cells
发布时间2019-08-23
DOI10.3390/cells8090959

实验完整度

包含细胞模型构建(CRISPR/Cas9)、增殖/凋亡/分化功能验证、机制验证(si-p53回补)等多层级证据。

主要模型

C2C12小鼠成肌细胞系(野生型) PFN2a过表达C2C12细胞系 si-p53处理的PFN2a过表达C2C12细胞

重点核对

PFN2a过表达细胞系的构建使用CRISPR/Cas9系统,通过ROSA26位点敲入PFN2a(图1)。 增殖检测使用EdU标记和流式细胞术分析细胞周期(图2)。 凋亡检测使用Annexin V-APC/7AAD染色和流式细胞术(图4)。 分化检测使用MyHC免疫荧光和Western blot(图3)。 机制验证使用si-p53敲低p53后观察PFN2a效应(图6)。

摘要

骨骼肌在身体活动和调节身体能量和蛋白质平衡中起着关键作用。成肌细胞的增殖、分化和凋亡是成肌过程中不可或缺的过程。Profilin 2a(PFN2a)是一种普遍存在的肌动蛋白单体结合蛋白,通过抑制组蛋白去乙酰化酶1(HDAC1)的核定位来促进肺癌的生长和转移。然而,PFN2a如何调控成肌细胞的成肌发育仍不清楚。我们构建了过表达PFN2a的C2C12小鼠成肌细胞系。使用CRISPR/Cas9系统研究PFN2a在C2C12成肌发育中的功能。我们发现PFN2a抑制增殖并促进凋亡,从而下调C2C12成肌发育。PFN2a的抑制也减少了细胞核中HDAC1的量,并在C2C12成肌发育过程中增加了p53的蛋白水平。因此,我们提出PFN2a通过p53通路抑制C2C12成肌发育。Si-p53(siRNA-p53)逆转了PFN2a对C2C12增殖的抑制作用和对C2C12凋亡的促进作用,并减弱了PFN2a对成肌分化的抑制。我们的结果扩展了对PFN2a在成肌发育中调控机制的理解,并为肌肉萎缩相关疾病提供了潜在的治疗靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
PFN2a如何调控C2C12成肌细胞的增殖、凋亡和成肌分化?
核心机制
PFN2a通过抑制HDAC1的核定位,减少核内HDAC1,增加p53蛋白水平,进而抑制细胞增殖并促进凋亡,从而抑制成肌分化。
主要证据
PFN2a过表达细胞系显示增殖标志物(PCNA、CCNB1、CCND1)下调,p21上调,凋亡相关caspase 8/3表达增加;si-p53可逆转这些效应并恢复成肌分化。
研究意义
研究扩展了对PFN2a在成肌发育中调控机制的理解,并为肌肉萎缩相关疾病提供潜在治疗靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

构建PFN2a过表达细胞系

建立PFN2a过表达的稳定细胞系以研究其功能。

使用CRISPR/Cas9系统将PFN2a表达盒插入ROSA26位点,经嘌呤霉素筛选获得单克隆细胞系,并通过PCR、qPCR和Western blot验证。

2

检测细胞增殖

评估PFN2a过表达对C2C12细胞增殖的影响。

通过EdU标记和流式细胞术分析细胞周期,qPCR和Western blot检测细胞周期相关基因和蛋白。

3

检测细胞凋亡

评估PFN2a过表达对分化过程中细胞凋亡的影响。

在分化第3天使用Annexin V-APC/7AAD染色进行流式细胞术检测凋亡,同时检测凋亡相关基因。

4

检测成肌分化

评估PFN2a过表达对肌管形成及肌节组装的影响。

分化第7天通过MyHC免疫荧光和α-Actinin共染观察肌管形态和肌节结构,qPCR检测分化标记基因。

5

机制验证

验证PFN2a是否通过p53通路发挥作用。

在PFN2a过表达细胞中转染si-p53,检测增殖、凋亡和分化变化。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
高糖DMEM培养基HycloneSH30243.01
胎牛血清GibcoFBS10099-141
马血清HycloneSH30074.03
GeneHero™小鼠ROSA26安全港基因敲入试剂盒GeneCopoeia IncSH-ROS-K200
HiScript® II Q RT SuperMix qPCR逆转录预混液(含去基因组DNA)VazymeR223-01
Hieff™ qPCR SYBR® Green预混液(无ROX)Yeasen11201ES08
Bio-Rad CFX96实时荧光定量PCR仪Bio-Rad--
Cell-Light EdU Apollo567体外检测试剂盒RiboBioC10310-1
细胞周期检测试剂盒KeyGEN BioTECHKGA512
Annexin V-APC/7AAD凋亡检测试剂盒Multisciences (Lianke) BiotechAP105-100-KIT
Guava® easyCyte™流式细胞仪Merck KgaA--
BD AccuriC6流式细胞仪BD Biosciences--
NE-PER™核浆蛋白提取试剂盒Pierce78833
Fisherbrand™显微镜盖玻片ThermoFisher12-542A
Triton X-100Sigma-AldrichT8787
牛血清白蛋白BOSTERAR0004
DAPIBeyotimeC1005
Nikon TE2000-U倒置显微镜Nikon Instruments--
Leica SP8激光共聚焦显微镜Leica--
Image J软件----
PFN2a抗体EnogeneE93047
CCNB1抗体CST4138
CCND1抗体CST2922
MyHC抗体BOSTERBM0096
Myogenin抗体SANTA CRUZJ2314
α-Actinin抗体GeneTexGTX103219
Caspase 3 (H-277)抗体SANTA CRUZsc-7148
Cleaved caspase 3 (Asp175)抗体CST9661
p53抗体GeneTexGTX70214
HDAC1抗体Biossbs-1414R
Tubulin抗体BioworldAP0064
Lamin B1抗体BioworldAP6001
β-actin抗体BioworldBS6007M
山羊抗兔IgG (H+L) HRP二抗BioworldBS13278
山羊抗小鼠IgG (H+L) HRP二抗BioworldBS12478
山羊抗小鼠IgG (H+L) Cy3二抗BioworldBS10006
山羊抗兔IgG Alexa Fluor 647二抗Biossbs-0295G-AF647

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与分化
C2C12细胞培养密度(增殖2×10^4/cm²,分化8×10^4/cm²),分化培养基含2%马血清,分化时间7天。
阅读提示:Methods 2.1节
基因编辑与细胞系构建
CRISPR/Cas9系统使用MCP-ROSA26-CG01载体和PFN2a donor,嘌呤霉素筛选浓度2 μg/mL,筛选时间7天。
阅读提示:Methods 2.2节,图1
增殖检测
EdU实验使用Cell-Light EdU Apollo567试剂盒,细胞密度2×10^4/cm²,培养24小时;细胞周期分析使用PI染色,密度同上。
阅读提示:Methods 2.5和2.6节,图2
凋亡检测
分化第3天使用Annexin V-APC/7AAD凋亡检测试剂盒,细胞密度8×10^4/cm²。
阅读提示:Methods 2.7节,图4
Western blot
抗体稀释浓度:PFN2a 1:1000, CCNB1 1:1000, CCND1 1:1000, MyHC 1:500, myogenin 1:200, α-Actinin 1:1000, caspase 3 1:1000, cleaved caspase 3 1:1000, p53 1:5000, HDAC1 1:1000, tubulin 1:5000, lamin B1 1:5000, β-actin 1:5000;二抗稀释:1:50000(HRP),1:200(荧光)。
阅读提示:Methods 2.8节,表4和表5
免疫荧光
分化第7天进行MyHC和α-Actinin免疫荧光,使用4%多聚甲醛固定,0.5% Triton X-100通透,5% BSA封闭,一抗4°C过夜,二抗室温2小时,DAPI染色30分钟。
阅读提示:Methods 2.10节,图3