NTCU诱导小鼠肺鳞状细胞癌模型
建立外周型肺鳞状细胞癌小鼠模型,模拟人类pLSCC的发生过程。
雌性A/J小鼠背部皮肤涂抹NTCU(0.013 M,75 μL,每周两次)16或20周,对照组涂抹丙酮。在16、20、24周处死小鼠,取肺组织进行组织病理学分析。
Role of deltaNp63(pos)CD44v(pos) cells in the development of N-nitroso-tris-chloroethylurea-induced peripheral-type mouse lung squamous cell carcinomas.
包含动物模型、组织病理学和免疫组化分析,但缺乏功能验证和机制验证实验。
雌性A/J小鼠NTCU诱导肺鳞状细胞癌模型 非典型细支气管增生、鳞状化生、鳞状异型增生和pLSCC病变组织
NTCU浓度0.013 M,溶剂丙酮,每次75 μL,每周两次(间隔3天),涂抹于背部皮肤,持续16或20周 雌性A/J小鼠,6周龄开始处理,对照组为丙酮处理 pLSCC分级为外周型或中央型,根据WHO分类分为高、中、低分化 免疫组化使用抗体包括CC10、CK5/6、deltaNp63、CD44v9等,具体稀释比例见方法 统计方法包括Student's t检验、Welch's t检验和Fisher精确检验,P<0.05为显著
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立外周型肺鳞状细胞癌小鼠模型,模拟人类pLSCC的发生过程。
雌性A/J小鼠背部皮肤涂抹NTCU(0.013 M,75 μL,每周两次)16或20周,对照组涂抹丙酮。在16、20、24周处死小鼠,取肺组织进行组织病理学分析。
鉴定NTCU诱导的肺部病变类型,并评估其随时间的变化。
对肺组织切片进行H&E染色,评分鳞状化生、鳞状异型增生和SCC的发生率和数量,并根据WHO分类确定SCC的分化程度和位置(外周型或中央型)。
确定病变中deltaNp63、CD44v、CK5/6、CC10等标记物的表达和共定位,以探讨细胞起源。
使用免疫组化和免疫荧光染色检测CC10、CK5/6、deltaNp63、CD44v等标记物在正常肺和病变组织中的表达,并进行三重染色观察共定位。
评估deltaNp63阳性CD44v阳性癌细胞在外周区域的增殖活性及相关信号通路激活。
通过免疫组化检测Ki67、EGFR、pEGFR、pSTAT3等蛋白表达,比较pLSCC外周和中央区域的阳性指数;检测PI3K/mTOR、NFE2L2/KEAP1、CDKN2A/RB1通路相关蛋白表达。
检测TAM在pLSCC中的分布及其与EGFR/STAT3信号的关系。
使用TAM标记物CD163L1、CD68、CD204进行免疫组化染色,计数外周和中央区域的阳性细胞;同时检测EGFR、pEGFR和pSTAT3的表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 化学诱导 | N-亚硝基-三氯乙基脲 | Toronto Research Chemicals | -- |
| 免疫组织化学 | Vectastain Elite ABC试剂盒 | Vector Laboratories | -- |
| 免疫荧光 | Alexa Fluor 350、488或594偶联二抗 | Invitrogen | -- |
| DAPI | Vector Laboratories | -- | |
| 免疫组织化学 | CC10抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-9772 |
| CK5/6抗体 | Millipore | MAB1620 | |
| deltaNp63抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-8609 | |
| CD44v9抗体 | -- | -- | |
| CD163L1抗体 | Abcam | ab126756 | |
| CD68抗体 | Abcam | ab3163 | |
| CD204抗体 | Bioss | bs-6763R | |
| EGFR抗体 | Epitomics | 1114-1 | |
| 磷酸化EGFR抗体 | Epitomics | 1727-1 | |
| 磷酸化STAT3抗体 | Cell Signaling Technology | 9145 | |
| PI3K抗体 | Cell Signaling Technology | 4249 | |
| 磷酸化mTOR抗体 | Cell Signaling Technology | 5536 | |
| 磷酸化PDK1抗体 | Cell Signaling Technology | 3438 | |
| 磷酸化4EBP1抗体 | Cell Signaling Technology | 9459 | |
| 磷酸化p70S6K抗体 | Cell Signaling Technology | 9204 | |
| HIF-1α抗体 | Novus | NB100-105 | |
| Nrf2抗体 | Abcam | ab137550 | |
| CDKN2A/p16 INK4A抗体 | LSBio | LS-B1347/22048 | |
| p38α抗体 | Cell Signaling Technology | 8690 | |
| 磷酸化p38α抗体 | Cell Signaling Technology | 4511 | |
| LSH抗体 | Millipore | ABD41 | |
| Trim29抗体 | ProteinTech | 17542-1-AP | |
| 显微镜 | 奥林巴斯BX51显微镜 | Olympus | -- |
| DP72数码相机 | Olympus | -- | |
| 软件 | cellSens Entry | Olympus | -- |
| 统计分析 | GraphPad Prism 5 | GraphPad Software | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物处理和NTCU诱导 | 小鼠周龄(6周)、性别(雌性)、NTCU浓度(0.013 M)、溶剂(丙酮)、剂量(75 μL)、频率(每周两次)、持续时间(16或20周) 阅读提示:Materials and Methods: Animals and experimental design |
| 组织病理学分析 | 切片厚度(2 μm)、染色方法(H&E)、病变评分标准(鳞状化生、异型增生、SCC)、分化程度分类(根据WHO) 阅读提示:Materials and Methods: Histopathological analysis |
| 免疫组织化学 | 抗体列表及稀释比例、抗原修复方法(未明确说明)、检测系统(Vectastain Elite ABC kit)、图像采集设备 阅读提示:Materials and Methods: Immunohistochemical studies |
| 统计方法 | 统计检验(t检验、Welch检验、Fisher精确检验)、显著性水平(P<0.05)、数据表示(mean±SD) 阅读提示:Materials and Methods: Statistical analysis |