细胞培养与LPS/LTA处理
建立LPS诱导的猪肠上皮细胞炎症模型,并考察不同浓度和时间LTA处理的效果。
IPEC‐J2细胞培养于DMEM/F12培养基(含10% FBS、1%青霉素-链霉素、1% ITS),待细胞80%融合后,用10 μg/mL LPS和不同浓度LTA(0.05、0.1、0.15 mM)处理,分别于0.5、1.5、4.5小时收集细胞和培养基。
The Effect of Clostridium butyricum-Derived Lipoteichoic Acid on Lipopolysaccharide-Stimulated Porcine Intestinal Epithelial Cells.
包含细胞模型(IPEC‐J2)的体外实验,进行LTA剂量和时间处理、ELISA、RT‐qPCR、Western blot及通路抑制剂验证,属于明确的功能和机制验证,但仅限体外,未涉及动物模型或临床样本,故评为中。
猪肠上皮细胞系IPEC‐J2
LTA浓度:0.05、0.1、0.15 mM LPS浓度:10 μg/mL 处理时间:0.5、1.5、4.5小时 通路抑制剂:C34(100 μM)抑制TLR4、PDTC(5 μM)抑制p65、SB230580(20 μM)抑制p38、U0126(5 μM)抑制ERK1/2 RT‐qPCR以β‐actin为内参,Western blot检测p38、ERK1/2、p65等的磷酸化水平
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立LPS诱导的猪肠上皮细胞炎症模型,并考察不同浓度和时间LTA处理的效果。
IPEC‐J2细胞培养于DMEM/F12培养基(含10% FBS、1%青霉素-链霉素、1% ITS),待细胞80%融合后,用10 μg/mL LPS和不同浓度LTA(0.05、0.1、0.15 mM)处理,分别于0.5、1.5、4.5小时收集细胞和培养基。
评价LTA对LPS刺激的IPEC‐J2细胞中TNF‐α和IL‐10分泌的影响。
收集细胞培养基,使用ELISA试剂盒测定TNF‐α和IL‐10的含量。
检测LTA处理对LPS刺激的IPEC‐J2细胞中炎症因子及TLR通路相关基因表达的影响。
提取细胞总RNA,反转录制备cDNA,使用RT‐qPCR检测TNF‐α、IL‐10、TLR4和TLR2的mRNA水平,以β‐actin为内参。
检测LTA处理对LPS刺激的IPEC‐J2细胞中TLR信号通路蛋白磷酸化水平的影响。
提取细胞总蛋白,使用Western blot检测p38、ERK1/2、p65及IκB‐α的总蛋白和磷酸化蛋白水平。
验证TLR4、p65、p38和ERK1/2在LTA调节TNF‐α和IL‐10表达中的作用。
IPEC‐J2细胞分别用通路抑制剂C34(TLR4)、PDTC(p65)、SB230580(p38)和U0126(ERK1/2)预处理,随后进行LPS或LPS+LTA处理,检测TNF‐α和IL‐10的基因表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 胎牛血清 | Gibco | 10099133 |
| DMEM/F12培养基 | Gibco | C11330500BT | |
| 青霉素和链霉素 | Gibco | 15140122 | |
| 胰岛素-转铁蛋白-硒 | Sigma-Aldrich | I3146 | |
| 药物处理 | 脂多糖 | Sigma-Aldrich | L3024 |
| C34 | Sigma-Aldrich | SML0832 | |
| PDTC | Sigma-Aldrich | P8765 | |
| SB230580 | Sigma-Aldrich | S8307 | |
| U0126 | Sigma-Aldrich | 662005 | |
| ELISA | TNF-α ELISA试剂盒 | R&D System | PTA00 |
| IL-10 ELISA试剂盒 | R&D System | P1000 | |
| RNA提取 | TRIzol | Invitrogen | 15596018 |
| RT-qPCR | SYBR PrimeScript RT-PCR试剂盒 | TaKaRa | -- |
| ExScript RT-PCR试剂盒 | TaKaRa | -- | |
| Western blot | p38 MAPK抗体 | CST | 9212 |
| 磷酸化p38 MAPK抗体 | CST | 4511 | |
| IκB-α抗体 | Signalway Antibody | 27531 | |
| Erk1/2抗体 | Signalway Antibody | 48616 | |
| 磷酸化Erk1/2抗体 | Signalway Antibody | 12082 | |
| 磷酸化NF-κB p65抗体 | Signalway Antibody | 11014 | |
| β-actin抗体 | Signalway Antibody | 52901 | |
| RNA定量 | NanoDrop ND-1000分光光度计 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| RT-qPCR | Mx3000P(实时荧光定量PCR仪) | Stratagene | -- |
| Western blot | RIPA裂解液 | ABclonal | -- |
| 蛋白酶抑制剂混合物(无EDTA) | Roche | -- | |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Thermo | -- | |
| PVDF膜 | Millipore | -- | |
| ECL增强化学发光试剂盒 | ABclonal | -- | |
| 化学发光凝胶成像系统 | Tanon | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与处理 | IPEC‐J2细胞培养条件、LPS浓度(10 μg/mL)、LTA浓度(0.05、0.1、0.15 mM)和处理时间(0.5、1.5、4.5小时) 阅读提示:参见Materials and Methods的2.2节 |
| 通路抑制剂预处理 | C34、PDTC、SB230580和U0126的浓度(100 μM、5 μM、20 μM、5 μM)和预处理时间(24 h、24 h、1 h、1 h) 阅读提示:参见Materials and Methods的2.2节和Results的3.4、3.5节 |
| 炎症因子检测 | ELISA试剂盒(TNF‐α: PTA00, IL‐10: P1000)及检测时间点(0.5、1.5、4.5小时) 阅读提示:参见Materials and Methods的2.1和2.2节 |
| 基因表达检测 | RT‐qPCR引物序列(TLR4、TLR2、IL‐10、TNF‐α、β‐actin)、内参基因(β‐actin)、分析方法(2^-ΔCT) 阅读提示:参见Materials and Methods的2.3节和Table 1 |
| 蛋白表达检测 | Western blot抗体(p38、phospho-p38、Erk1/2、phospho-Erk1/2、phospho-NF-κB p65、IκB-α、β-actin)及上样量(80 μg) 阅读提示:参见Materials and Methods的2.4节和Results的3.3节 |