丁酸梭菌来源的脂磷壁酸对脂多糖刺激的猪肠上皮细胞的影响

The Effect of Clostridium butyricum-Derived Lipoteichoic Acid on Lipopolysaccharide-Stimulated Porcine Intestinal Epithelial Cells.

作者信息Qu Chen, Lingyan Ma, Yang Wen, Wentao Lyu, Minjie Yu, Hua Yang, Yingping Xiao
PMID39749788
发布时间2025-01
DOI10.1002/vms3.70157

实验完整度

包含细胞模型(IPEC‐J2)的体外实验,进行LTA剂量和时间处理、ELISA、RT‐qPCR、Western blot及通路抑制剂验证,属于明确的功能和机制验证,但仅限体外,未涉及动物模型或临床样本,故评为中。

主要模型

猪肠上皮细胞系IPEC‐J2

重点核对

LTA浓度:0.05、0.1、0.15 mM LPS浓度:10 μg/mL 处理时间:0.5、1.5、4.5小时 通路抑制剂:C34(100 μM)抑制TLR4、PDTC(5 μM)抑制p65、SB230580(20 μM)抑制p38、U0126(5 μM)抑制ERK1/2 RT‐qPCR以β‐actin为内参,Western blot检测p38、ERK1/2、p65等的磷酸化水平

摘要

背景:丁酸梭菌是一种广泛应用于畜牧业的益生菌,有证据表明它可以减轻猪的肠道炎症,可能与其脂磷壁酸(LTA)有关,但其机制仍不清楚。目的:本研究旨在确定丁酸梭菌LTA对脂多糖刺激的猪肠上皮细胞系J2(IPEC‐J2)炎症的调节作用及潜在机制。方法:用LPS和不同浓度的LTA(0.05、0.1和0.15 mM)处理IPEC‐J2细胞。在处理0.5、1.5和4.5小时后,收集细胞培养基用于使用ELISA试剂盒测量TNF‐α和IL‐10,并收集细胞用于RT‐qPCR和Western blot检测。通过用拮抗剂C34、PDTC、SB230580和U0126抑制toll样受体通路中的关键蛋白,进一步阐明LTA调节IL‐10和TNF‐α基因表达的途径。结果:高剂量LTA显著促进IPEC‐J2细胞中抗炎因子IL‐10的分泌,并在短期内抑制促炎因子TNF‐α的表达和分泌。LTA抑制LPS刺激细胞中TLR4的基因表达,并降低p38、ERK1/2和p65的蛋白磷酸化水平。抑制TLR4、p38、ERK1/2和p65可降低LPS引起的TNF‐α基因表达;LTA增加TLR2基因表达,抑制p38、ERK和p65而非TLR4可降低IL‐10基因表达。结论:我们的研究发现丁酸梭菌LTA是丁酸梭菌调节IPEC‐J2细胞炎症反应的重要成分。LTA主要通过抑制TLR4减少TNF‐α的表达,而刺激TLR2增加IL‐10的表达。下游p65、p38和ERK1/2参与调节TNF‐α和IL‐10。然而,TLR4仅与LPS引起的TNF‐α升高有关,而与LTA引起的IL‐10升高无关。我们的工作补充了丁酸梭菌的益生机制,为丁酸梭菌LTA的应用提供了理论基础。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
丁酸梭菌来源的脂磷壁酸(LTA)对脂多糖(LPS)刺激的猪肠上皮细胞IPEC‐J2的炎症反应是否具有调节作用,以及其潜在机制是什么?
核心机制
LTA通过抑制TLR4减少LPS诱导的TNF‐α表达,通过激活TLR2促进IL‐10表达,下游p65、p38和ERK1/2同时参与TNF‐α和IL‐10的调节。
主要证据
在IPEC‐J2细胞中,高剂量LTA(0.15 mM)短期处理抑制TNF‐α分泌并促进IL‐10分泌;RT‐qPCR显示LTA降低TLR4基因表达、升高TLR2基因表达;Western blot显示LTA降低p38、ERK1/2、p65磷酸化水平;通路抑制剂实验证实抑制TLR4、p65、p38和ERK1/2降低TNF‐α基因表达,抑制p65、p38和ERK1/2(而非TLR4)降低IL‐10基因表达。
研究意义
该研究补充了丁酸梭菌的益生机制,为丁酸梭菌LTA在猪肠道炎症防治中的应用提供了理论基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

细胞培养与LPS/LTA处理

建立LPS诱导的猪肠上皮细胞炎症模型,并考察不同浓度和时间LTA处理的效果。

IPEC‐J2细胞培养于DMEM/F12培养基(含10% FBS、1%青霉素-链霉素、1% ITS),待细胞80%融合后,用10 μg/mL LPS和不同浓度LTA(0.05、0.1、0.15 mM)处理,分别于0.5、1.5、4.5小时收集细胞和培养基。

2

炎症因子分泌检测

评价LTA对LPS刺激的IPEC‐J2细胞中TNF‐α和IL‐10分泌的影响。

收集细胞培养基,使用ELISA试剂盒测定TNF‐α和IL‐10的含量。

3

基因表达检测

检测LTA处理对LPS刺激的IPEC‐J2细胞中炎症因子及TLR通路相关基因表达的影响。

提取细胞总RNA,反转录制备cDNA,使用RT‐qPCR检测TNF‐α、IL‐10、TLR4和TLR2的mRNA水平,以β‐actin为内参。

4

蛋白表达检测

检测LTA处理对LPS刺激的IPEC‐J2细胞中TLR信号通路蛋白磷酸化水平的影响。

提取细胞总蛋白,使用Western blot检测p38、ERK1/2、p65及IκB‐α的总蛋白和磷酸化蛋白水平。

5

通路抑制剂验证

验证TLR4、p65、p38和ERK1/2在LTA调节TNF‐α和IL‐10表达中的作用。

IPEC‐J2细胞分别用通路抑制剂C34(TLR4)、PDTC(p65)、SB230580(p38)和U0126(ERK1/2)预处理,随后进行LPS或LPS+LTA处理,检测TNF‐α和IL‐10的基因表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证样本或模型特征
验证细胞功能变化
验证分子表达变化
验证机制链路

产品清单

实验环节名称品牌货号
胎牛血清Gibco10099133
DMEM/F12培养基GibcoC11330500BT
青霉素和链霉素Gibco15140122
胰岛素-转铁蛋白-硒Sigma-AldrichI3146
脂多糖Sigma-AldrichL3024
C34Sigma-AldrichSML0832
PDTCSigma-AldrichP8765
SB230580Sigma-AldrichS8307
U0126Sigma-Aldrich662005
TNF-α ELISA试剂盒R&D SystemPTA00
IL-10 ELISA试剂盒R&D SystemP1000
TRIzolInvitrogen15596018
SYBR PrimeScript RT-PCR试剂盒TaKaRa--
ExScript RT-PCR试剂盒TaKaRa--
p38 MAPK抗体CST9212
磷酸化p38 MAPK抗体CST4511
IκB-α抗体Signalway Antibody27531
Erk1/2抗体Signalway Antibody48616
磷酸化Erk1/2抗体Signalway Antibody12082
磷酸化NF-κB p65抗体Signalway Antibody11014
β-actin抗体Signalway Antibody52901
NanoDrop ND-1000分光光度计Thermo Fisher Scientific--
Mx3000P(实时荧光定量PCR仪)Stratagene--
RIPA裂解液ABclonal--
蛋白酶抑制剂混合物(无EDTA)Roche--
BCA蛋白定量试剂盒Thermo--
PVDF膜Millipore--
ECL增强化学发光试剂盒ABclonal--
化学发光凝胶成像系统Tanon--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与处理
IPEC‐J2细胞培养条件、LPS浓度(10 μg/mL)、LTA浓度(0.05、0.1、0.15 mM)和处理时间(0.5、1.5、4.5小时)
阅读提示:参见Materials and Methods的2.2节
通路抑制剂预处理
C34、PDTC、SB230580和U0126的浓度(100 μM、5 μM、20 μM、5 μM)和预处理时间(24 h、24 h、1 h、1 h)
阅读提示:参见Materials and Methods的2.2节和Results的3.4、3.5节
炎症因子检测
ELISA试剂盒(TNF‐α: PTA00, IL‐10: P1000)及检测时间点(0.5、1.5、4.5小时)
阅读提示:参见Materials and Methods的2.1和2.2节
基因表达检测
RT‐qPCR引物序列(TLR4、TLR2、IL‐10、TNF‐α、β‐actin)、内参基因(β‐actin)、分析方法(2^-ΔCT)
阅读提示:参见Materials and Methods的2.3节和Table 1
蛋白表达检测
Western blot抗体(p38、phospho-p38、Erk1/2、phospho-Erk1/2、phospho-NF-κB p65、IκB-α、β-actin)及上样量(80 μg)
阅读提示:参见Materials and Methods的2.4节和Results的3.3节