CMA/DOX-Fe的制备与表征
制备并表征具有适当粒径、悬浮性、吸附性和降解性的载药栓塞微球。
通过羧甲基壳聚糖和PEG制备CM,经丙烯酸接枝和电子束辐照得到CMA,然后吸附DOX和铁离子形成CMA/DOX-Fe。通过FTIR、SEM、粒径分布、悬浮时间、吸附和释放实验评估其特性。
Functional doxorubicin and iron ions dual-loaded carboxymethyl chitin-based microspheres for hepatocellular carcinoma therapy via embolization, ferroptosis, and autophagy-mediated HIF-1α inhibition
包含体外细胞实验(HepG2)、体内兔VX2肝癌模型、血管栓塞模型、分子对接及自噬和铁死亡机制验证。
HepG2细胞 兔VX2肝癌模型 兔耳缘静脉栓塞模型 兔肾动脉栓塞模型
CMA/DOX-Fe的制备中CM、CMA、DOX和铁离子的投料比及吸附条件 HepG2细胞缺氧培养的氧浓度(10% O2)和时间(24-72h) CMA/DOX-Fe处理HepG2细胞的剂量和时间 兔VX2肝癌模型的建立和栓塞操作流程 DOX与ATG5结合的分子对接、CETSA和DARTS实验条件
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
制备并表征具有适当粒径、悬浮性、吸附性和降解性的载药栓塞微球。
通过羧甲基壳聚糖和PEG制备CM,经丙烯酸接枝和电子束辐照得到CMA,然后吸附DOX和铁离子形成CMA/DOX-Fe。通过FTIR、SEM、粒径分布、悬浮时间、吸附和释放实验评估其特性。
验证CMA/DOX-Fe的促凝血、血小板激活和红细胞吸附能力。
通过体外凝血时间、APTT、血小板形态和红细胞吸附实验,以及小鼠肝脏切口出血模型,评估促凝血性能。
评估CMA/DOX-Fe在体内的栓塞效果和安全性。
将CMA或CMA/DOX-Fe注入兔耳缘静脉和肾动脉,通过DSA、大体观察和组织学检查评估栓塞效果。
评估CMA/DOX-Fe经肝动脉栓塞化疗的抗肿瘤疗效。
建立兔VX2肝癌模型,通过肝动脉注射PBS、CMA或CMA/DOX-Fe,CT监测肿瘤生长,TUNEL和PCNA/Ki67染色评估凋亡和增殖。
验证CMA/DOX-Fe对HepG2细胞铁死亡和增殖的影响。
通过EDU染色、集落形成、CCK-8、铁离子探针、脂质过氧化物检测、TEM和Western blot检测铁死亡标志物。
证明DOX直接靶向ATG5。
利用分子对接、CETSA和DARTS实验验证DOX与ATG5的结合。
评估CMA/DOX-Fe在缺氧条件下对HIF-1α信号通路的抑制作用。
将HepG2细胞置于10% O2缺氧培养,检测HIF-1α、MMP-2、MMP-9和TGF-β的表达。在体内兔肿瘤组织进行IHC和Western blot验证。
验证CMA/DOX-Fe诱导自噬并降解HIF-1α。
通过GFP-LC3转染、溶酶体共定位、TEM、Western blot检测自噬标志物。使用3-MA抑制自噬,观察HIF-1α降解是否受阻。
评估CMA/DOX-Fe的血液相容性、细胞毒性、体内降解性和生物安全性。
通过溶血实验、细胞活力检测、血细胞计数、组织HE染色和皮下植入实验评估安全性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 材料制备 | 阿霉素 | MACKLIN | D807083 |
| 甲壳素 | Golden-Shell Biochemical | 1398-61-4 | |
| 细胞培养 | Dulbecco改良Eagle培养基 | Servicebio | G4511 |
| 胎牛血清 | QmSuero/Tsingmu Biotechnology | -- | |
| 细胞增殖检测 | CCK-8试剂 | biosharp | BS350A |
| EDU试剂 | Beyotime | C0071S | |
| 铁离子检测 | FeRhoNox-1探针 | MKbio | MX4558-50UG |
| PGSK探针 | GlpBio | GC40243 | |
| 溶酶体检测 | 溶酶体探针 | Beyotime | C1047S |
| Western blot | GPX4抗体 | proteintech | 14432-1-AP |
| ACSL4抗体 | proteintech | 22401-1-AP | |
| TfR-1抗体 | proteintech | 10084-2-AP | |
| HIF-1α抗体 | proteintech | 20960-1-AP | |
| LC3-II抗体 | proteintech | 14600-1-AP | |
| Beclin-1抗体 | proteintech | 11306-1-AP | |
| P62抗体 | proteintech | 18420-1-AP | |
| ATG5抗体 | proteintech | 10181-2-AP | |
| MMP-2抗体 | proteintech | 10373-2-AP | |
| MMP-9抗体 | proteintech | 10375-2-AP | |
| PCNA抗体 | Bioss | bs-2006R | |
| GAPDH抗体 | BioPM | PMK053C | |
| 凋亡检测 | TUNEL试剂 | Beyotime | C1086 |
| DARTS | 蛋白酶E | MCE | 9036-06-0 |
| 自噬检测 | GPF-LC3质粒 | genomeditech | GM-MC-140869 |
| 自噬抑制 | 3-甲基腺嘌呤 | MedChemExpress | HY-19312 |
| 铁死亡抑制 | Ferrostatin-1 | TargetMol | 347174-05-4 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| CMA/DOX-Fe的制备 | CM制备时的羧甲基壳聚糖和PEG10000的浓度及比例,丙烯酸溶液浓度,电子束辐照剂量,DOX和铁离子的装载比例 阅读提示:Methods 2.2节 |
| 体外细胞实验 | HepG2细胞的培养条件(5% CO2, 37°C),DMEM培养基成分(10% FBS),CMA/DOX-Fe的处理浓度和时间 阅读提示:Methods 2.4节 |
| 缺氧培养 | 缺氧培养箱的氧浓度(10% O2),预平衡时间(4h),培养时间(24-72h) 阅读提示:Methods 2.6节 |
| 动物模型 | 兔的品系、体重(2-3kg),VX2肿瘤组织块的制备和植入方法,动物分组(Control、CMA、CMA/DOX-Fe),栓塞操作细节 阅读提示:Methods 2.3节 |
| 自噬和HIF-1α检测 | GFP-LC3质粒转染条件,3-MA浓度(5 mM)和时间(6h),抗体稀释比和孵育条件 阅读提示:Methods 2.7节 |