验证RBP-J在结肠巨噬细胞中的敲除效率
确认RBP-J在结肠巨噬细胞中特异性缺失,排除发育或稳态异常的影响
通过qPCR和免疫印迹检测分选的LP CD64+Ly6C−结肠巨噬细胞中RBP-J表达,并比较稳态下WT和RBP-J KO小鼠结肠结构、巨噬细胞数量和微生物组成
The colonic macrophage transcription factor RBP-J orchestrates intestinal immunity against bacterial pathogens
包含遗传小鼠模型(RBP-J KO、miR-17∼92 KO、DKO)进行体内功能验证,体外巨噬细胞-T细胞共培养和机制研究,以及小RNA测序等组学分析,多个证据层级验证。
小鼠柠檬酸杆菌感染模型 RBP-J条件性敲除小鼠(Rbpjfl/fl Lyz2-Cre) miR-17∼92条件性敲除小鼠(miR-17∼92fl/fl Lyz2-Cre)
RBP-J敲除效率验证:qPCR和免疫印迹检测分选结肠巨噬细胞中RBP-J表达 C. rodentium感染剂量:2×10^9或4×10^9 CFU口服灌胃 IL-6补充实验:感染后第3天和第5天腹腔注射200 ng重组IL-6 新霉素清除病原体实验:感染后第12天口服1 mg/ml新霉素硫酸盐
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确认RBP-J在结肠巨噬细胞中特异性缺失,排除发育或稳态异常的影响
通过qPCR和免疫印迹检测分选的LP CD64+Ly6C−结肠巨噬细胞中RBP-J表达,并比较稳态下WT和RBP-J KO小鼠结肠结构、巨噬细胞数量和微生物组成
评估RBP-J缺陷对宿主清除C. rodentium能力的影响
小鼠经口灌胃感染C. rodentium,在不同时间点收集结肠和粪便,通过qPCR检测16S rDNA拷贝数监测细菌负荷
确定RBP-J缺陷影响适应性免疫反应的细胞类型和关键分子
在感染后第7天,通过qPCR和流式细胞术检测结肠组织和LP中细胞因子表达、Th17细胞比例、中性粒细胞招募、ILC3和抗体反应
阐明RBP-J促进IL-6产生的分子机制
通过ChIP、小RNA测序、qPCR、Western blot、荧光素酶报告基因和siRNA敲减实验,验证RBP-J抑制miR-17∼92簇进而上调C/EBPβ,从而促进IL-6表达
验证miR-17∼92簇是RBP-J的关键下游靶点
构建Rbpj和miR-17∼92双敲除小鼠,感染后评估细菌负荷、IL-6和IL-17A表达、Th17细胞和中性粒细胞反应
探索RBP-J KO小鼠最终清除病原体的补偿机制
在感染后第12-14天,检测结肠IL-22和抗菌肽表达,通过免疫荧光和流式细胞术鉴定IL-22来源细胞,并用新霉素清除病原体验证因果关系
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细菌培养 | 柠檬酸杆菌DBS100菌株 | American Type Culture Collection | ATCC51459 |
| 表达GFP的柠檬酸杆菌 | -- | -- | |
| 细胞刺激 | 脂多糖(E. coli O111:B4) | Sigma-Aldrich | -- |
| 抗生素处理 | 硫酸新霉素 | Sigma-Aldrich | -- |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| HEK293T细胞 | -- | -- | |
| 细胞刺激 | 佛波酯 | Sigma-Aldrich | -- |
| 离子霉素 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 细胞因子ELISA | 白细胞介素-6 | Peprotech | -- |
| 白细胞介素-1β | BD Biosciences | -- | |
| ELISA | SBA Clonotyping系统 | Southern Biotech | -- |
| qPCR | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| M-MLV逆转录酶 | Takara | -- | |
| FastSYBR混合物 | CWBIO | -- | |
| TaqMan microRNA逆转录试剂盒 | Applied Biosystems | -- | |
| TaqMan microRNA检测 | Applied Biosystems | -- | |
| ChIP | SimpleChIP酶法ChIP试剂盒 | Cell Signaling Technology | -- |
| RBP-J抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| Western blot | 抗C/EBPβ抗体 | Abcam | ab32358 |
| β-肌动蛋白抗体 | ABclonal Technology | ac026 | |
| 磷酸化p44/42 MAPK(Erk1/2)兔单抗 | Cell Signaling Technology | 4370 | |
| 磷酸化p38 MAPK兔单抗 | Cell Signaling Technology | 9215 | |
| 磷酸化NF-κB p65兔单抗 | Cell Signaling Technology | 3033 | |
| RBP-J兔单抗 | Cell Signaling Technology | 5313 | |
| STAT3小鼠单抗 | Cell Signaling Technology | 9139 | |
| 羊抗兔IgG(H&L)-HRP偶联抗体 | EASYBIO | BE0101 | |
| 羊抗小鼠IgG抗体 | EASYBIO | BE0102 | |
| SuperSignal West Pico化学发光底物 | Thermo Scientific | 34080 | |
| 荧光素酶报告基因 | psiCHECK2载体 | Promega | -- |
| pCMV-miR-17∼92表达质粒 | -- | -- | |
| FuGENE HD转染试剂 | Promega | -- | |
| 双荧光素酶报告检测系统 | Promega | -- | |
| RNA干扰 | 靶向小鼠Cebpb的siRNA | GenePharma | -- |
| INVI DNA RNA转染试剂 | Invigentech | -- | |
| 流式细胞术 | 抗CD45抗体 | BioLegend | -- |
| 抗I-Ab抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗Ly6C抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗CD64抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗CD103抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗CX3CR1抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗CD4抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗CD44抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗CD62L抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗CD69抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗CD90.2抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗CD11b抗体 | eBioscience | -- | |
| 抗CD11c抗体 | eBioscience | -- | |
| 抗F4/80抗体 | eBioscience | -- | |
| 抗CD3抗体 | eBioscience | -- | |
| 抗IL-17a抗体 | eBioscience | -- | |
| 抗IL-22抗体 | eBioscience | -- | |
| 抗Foxp3抗体 | eBioscience | -- | |
| 抗RORγt抗体 | eBioscience | -- | |
| 抗STAT3抗体 | eBioscience | -- | |
| 抗SiglecF抗体 | BD Biosciences | -- | |
| 抗Ly6G抗体 | BD Biosciences | -- | |
| 抗CD25抗体 | BD Biosciences | -- | |
| 同型对照抗体 | BioLegend | -- | |
| 可固定活力染料eFluor 506 | eBioscience | -- | |
| 固定和透化试剂盒 | BD Biosciences | -- | |
| Foxp3/转录因子染色缓冲液套装 | eBioscience | -- | |
| 抗C/EBPβ抗体 | Abcam | ab32358 | |
| 兔IgG同型对照 | Abcam | ab172730 | |
| 驴抗兔IgG-FITC | Santa Cruz | sc-2090 | |
| FACSFortessa流式细胞仪 | BD Biosciences | -- | |
| FACSAria III流式细胞分选仪 | BD Biosciences | -- | |
| FlowJo软件 | Tree Star | -- | |
| 免疫组织化学 | 抗Reg3g抗体 | Abgent | AP5606c |
| 免疫荧光 | OCT包埋剂4583 | Sakura Finetek | -- |
| 抗绿色荧光蛋白抗体 | Invitrogen | A11122 | |
| IL-22抗体 | Novus | NB100-737 | |
| 羊抗兔IgG-TR | Santa Cruz | sc-2780 | |
| DAPI | -- | -- | |
| SlowFade Diamond抗淬灭封片剂 | Life Technologies | -- | |
| 细胞分离 | IV型胶原酶 | Sigma-Aldrich | -- |
| 分散酶 | Roche | -- | |
| 脱氧核糖核酸酶I | Sigma-Aldrich | -- | |
| Percoll分离液 | GE Healthcare | -- | |
| Hank's平衡盐溶液 | -- | -- | |
| HEPES | -- | -- | |
| EDTA | Promega | -- | |
| 二硫苏糖醇 | Fermentas | -- | |
| RPMI 1640培养基 | -- | -- | |
| 细胞分选 | CD4(L3T4)MACS分选柱 | Miltenyi Biotech | -- |
| 体外T细胞分化 | 抗CD3抗体 | Sungene | -- |
| 抗CD28抗体 | Sungene | -- | |
| 重组人转化生长因子-β | R&D Systems | -- | |
| 白细胞介素-6 | Peprotech | -- | |
| 小RNA测序 | mirVana miRNA分离试剂盒 | Life Technologies | -- |
| Illumina TruSeq小RNA文库制备试剂盒 | Illumina | -- | |
| Illumina HiSeq 1500测序平台 | Illumina | -- | |
| 数据分析 | Prism 6.0统计软件 | GraphPad Software | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 小鼠模型 | 条件性敲除小鼠品系(Rbpjfl/fl Lyz2-Cre等),年龄6-8周,性别匹配,C57/BL6背景,SPF环境 阅读提示:Materials and methods: Mice |
| 感染实验 | C. rodentium菌株(DBS100或GFP标记),感染剂量2×10^9或4×10^9 CFU,口服灌胃体积200 µl 阅读提示:Materials and methods: C. rodentium infection and depletion; Figure legends |
| 免疫反应分析 | 检测时间点(第7天免疫反应,第14天晚期),组织处理和LP细胞分离方法,流式抗体克隆号和稀释度 阅读提示:Materials and methods: Preparation of colonic LP mononuclear cells, Flow cytometry |
| 机制验证 | BMDM培养条件(L929上清),刺激物(热灭活C. rodentium MOI=0.5或LPS 10 ng/ml),siRNA敲减Cebpb,荧光素酶报告质粒构建设计 阅读提示:Materials and methods: Cell isolation, RNA-mediated interference, Luciferase reporter assays |
| 体内回补实验 | 重组IL-6腹腔注射剂量(200 ng/只),时间(第3和5天),新霉素清除剂量(1 mg/ml,250 µl)和时间(第12天) 阅读提示:Materials and methods: IL-6 administration in vivo, C. rodentium infection and depletion |