活细胞成像显示染色体外DNA元件的不均匀分离和具有转录活性的染色体外DNA中心在癌症中的分布

Live-Cell Imaging Shows Uneven Segregation of Extrachromosomal DNA Elements and Transcriptionally Active Extrachromosomal DNA Hubs in Cancer

作者信息Eunhee Yi, Amit D Gujar, Molly Guthrie, Hoon Kim, Dacheng Zhao, Kevin C Johnson, Samirkumar B Amin, Megan L Costa, Qianru Yu, Sunit Das, Nathaniel Jillette, Patricia A Clow, Albert W Cheng, Roel G W Verhaak
PMID34819316
发布时间2022-02
DOI10.1158/2159-8290.CD-21-1376

实验完整度

包含FISH分析、CRISPR活细胞成像、免疫荧光、RNA FISH等多层级实验,并进行了功能验证和机制探究。

主要模型

神经球细胞系HF3016和HF3177 前列腺癌细胞系PC3 胶质母细胞瘤患者肿瘤组织

重点核对

ecTag系统验证中,使用PUFBS重复数为15或25的sgRNA,转染质粒量(dCas9 75-1250 ng,sgRNA 150-1250 ng,Clover 75-1250 ng) FISH分析中,探针针对EGFR和Chr7,样本包括4例GBM组织和2个神经球细胞系 ecTag靶向效率通过FISH验证,目标效率约81.2%,on-target效率约67.3% 有丝分裂追踪中,细胞系HF3016和PC3用于观察ecDNA分离,计数子代细胞ecDNA数量 ecDNA hub的形成在48小时内超过50%的细胞中观察,通过双色ecTag和光漂白实验证实

摘要

致癌染色体外DNA元件(ecDNAs)在肿瘤演变中扮演重要角色,但我们对ecDNA生物学的理解有限。我们确定了患者组织和细胞系模型中单细胞ecDNA拷贝数的分布,并观察到细胞间ecDNA频率差异极大。ecDNA的肿瘤内异质性异常显著,提示存在ecDNA特异的复制和传播机制。为了评估有丝分裂过程中ecDNA遗传物质从亲代细胞向子代细胞的传递,我们建立了基于CRISPR的ecTag方法。ecTag利用ecDNA特异的断点序列,在活细胞中用荧光标记ecDNA。在有丝分裂期间应用ecTag揭示了不连续的ecDNA遗传模式,使得ecDNA在单个细胞中能够快速积累。有丝分裂后,ecDNA聚集形成ecDNA中心(ecDNA hubs),并且ecDNA中心与RNA聚合酶II共定位,促进癌基因的转录。我们的观察提供了ecDNA不均匀分离的直接证据,并为ecDNA如何促进肿瘤发生提供了新的见解。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
ecDNA在肿瘤细胞中如何分离和分布,及其对转录活性的影响?
核心机制
ecDNA在有丝分裂中不均匀随机分离,导致细胞间拷贝数异质性;ecDNA可聚集形成hub,招募RNA聚合酶II,增强癌基因转录。
主要证据
FISH分析显示ecDNA拷贝数分布变异性高(MAD显著高于线性扩增);ecTag活细胞成像直接观察到不均匀分离;ecDNA hub与RNAPII共定位,且RNA FISH显示EGFR表达与hub大小正相关。
研究意义
揭示ecDNA不均匀分离和hub形成是促进肿瘤异质性和癌基因高表达的新机制,为ecDNA在肿瘤演变中的作用提供了见解。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

ecDNA拷贝数分布分析

评估ecDNA在肿瘤组织和细胞系中的单细胞拷贝数变异性,与线性扩增基因比较。

对4例GBM组织(SM006, SM012, SM017, SM018)和2个神经球细胞系(HF3016, HF3177)进行间期FISH,检测EGFR ecDNA和染色体7对照;对多种细胞系进行泛癌FISH分析。

2

ecTag系统开发与验证

建立并验证基于CRISPR的ecDNA活细胞标记方法。

利用WGS数据鉴定ecDNA断点,设计sgRNA,构建Casilio系统(dCas9, PUFBS-sgRNA, Clover-PUF),在HF3016、HF3177和PC3细胞中验证靶向效率和特异性,通过DNA FISH验证。

3

有丝分裂ecDNA分离追踪

直接观察ecDNA在有丝分裂过程中的分配模式。

使用ecTag标记ecDNA,对HF3016和PC3细胞进行活细胞延时成像,定量分析子代细胞中ecDNA数量;并检测连续传代后ecDNA分布变化。

4

ecDNA hub形成与转录活性分析

探究ecDNA聚集形成hub及其与转录活性的关联。

通过活细胞成像观察ecDNA hub形成;使用免疫荧光检测与Cajal体、PML体、RNAPII的共定位;进行EGFR RNA FISH,分析ecDNA信号大小与EGFR表达的关系。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM/F12培养基Invitrogen11330
N-2添加剂Gibco17502-048
牛血清白蛋白SigmaA4919
庆大霉素试剂Gibco15710-064
抗生素/抗真菌剂Invitrogen15240-062
表皮生长因子Peprotech100-15
碱性成纤维细胞生长因子Peprotech100-18B
F12-K培养基ATCC30-2004
胎牛血清VWR97068-085
Lipofectamine 3000转染试剂InvitrogenL3000015
EGFR-Chr7探针Empire GenomicsEGFR-CHR07-20-ORGR
VECTASHIELD封片剂(含DAPI)Vector Laboratories--
Leica STED 3X/DLS共聚焦显微镜Leica--
EGFR抗体Cell Signaling--
β-肌动蛋白抗体Cell Signaling--
Alexa 555二抗Abcam--
Coilin抗体Abcam--
PML抗体Abcam--
RNA聚合酶II抗体Abcam--
Ki67抗体Abcam--
Quasar 670标记EGFR探针Biosearch Technologies--
Click-iT RNA Alexa Fluor 594成像试剂盒InvitrogenC10330
QIAamp DNA微型试剂盒Qiagen51304
Quick DNA Mini Prep Plus试剂盒Zymo ResearchD4068
AccuPrime Taq DNA聚合酶系统Invitrogen12339016
SYBR-Safe染料InvitrogenS33102
Nucleospin凝胶和PCR纯化试剂盒Macherey-Nagel740609
秋水仙胺Roche10-295-892-001
BbsI限制酶NEBR3539
T4连接酶Roche4898117001
Guide-it完整sgRNA筛选系统Takara632636
CellMask深红质膜染料InvitrogenC10046
NucBlue活细胞ReadyProbeInvitrogenR37605
Hoechst 33342染料InvitrogenH3070
Opera Phenix高内涵筛选系统PerkinElmer--
Dragonfly共聚焦显微镜Andor--
iXon EMCCD相机Andor--
FACSAria Fusion流式分选仪BD Biosciences--
CellTiter-Glo 3D细胞活力检测试剂盒Promega--
Cytation 3细胞成像多功能读板机BioTek--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
FISH分析
探针类型(EGFR-Chr7)、组织处理和杂交条件(75°C变性5分钟,37°C过夜)
阅读提示:Methods: FISH analysis
ecTag转染
质粒量(dCas9, sgRNA, Clover)、转染试剂(Lipofectamine 3000)、细胞密度
阅读提示:Methods: ecTag transfection for ecTag-targeting cell counting
活细胞成像
细胞类型(HF3016, PC3)、成像系统(Opera Phenix)、时间间隔(30分钟)、持续时间(24-48小时)
阅读提示:Methods: Live-cell imaging
免疫荧光
抗体(Coilin, PML, RNAPII, Ki67)及稀释比例、固定和渗透条件
阅读提示:Methods: Immunofluorescence staining
RNA FISH
探针(EGFR Quasar 670)、固定和杂交条件、共聚焦显微镜设置
阅读提示:Methods: EGFR RNA FISH