建立茄病镰刀菌角膜炎小鼠模型
构建茄病镰刀菌感染的小鼠角膜模型,用于研究真菌性角膜炎的发病机制。
雄性C57BL/6小鼠右眼角膜基质内注射2 μL 4.5×10⁶ CFU/mL茄病镰刀菌孢子悬液,左眼不注射作为对照。术前使用左氧氟沙星滴眼液(每日两次,共3天)和聚维酮碘消毒。
Fusarium solani Activates PANoptosis and Modulates Immune Response in Fungal Keratitis
包含小鼠体内感染模型和HCE-T细胞体外实验,结合转录组测序、免疫浸润分析和蛋白质印迹等功能验证。
茄病镰刀菌感染的小鼠角膜模型 人角膜上皮HCE-T细胞
小鼠角膜感染模型:雄性C57BL/6小鼠(18-20g,6-8周龄),右眼角膜基质内注射2 μL 4.5×10⁶ CFU/mL茄病镰刀菌孢子悬液 DON处理HCE-T细胞:使用DON浓度梯度(1.25、2.5、5、10、20 µM)处理24小时,以及5 µM DON处理24小时和48小时 Western blot:检测cleaved caspase-1、-3、-7、-8,cleaved GSDMD,p-MLKL等蛋白表达,GAPDH作为内参 RNA-seq:每组4个样本(感染vs正常角膜;DON处理vs未处理细胞),差异表达基因分析P<0.05 统计分析:使用非配对双尾Student's t检验或单因素方差分析,显著性水平*P<0.05
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
构建茄病镰刀菌感染的小鼠角膜模型,用于研究真菌性角膜炎的发病机制。
雄性C57BL/6小鼠右眼角膜基质内注射2 μL 4.5×10⁶ CFU/mL茄病镰刀菌孢子悬液,左眼不注射作为对照。术前使用左氧氟沙星滴眼液(每日两次,共3天)和聚维酮碘消毒。
评估感染后角膜的临床严重程度和组织病理学变化。
在感染后1、3、5、7、10天,对角膜混浊、表面规则性和混浊范围进行评分,并拍照。第3天取角膜进行石蜡包埋、切片和H&E染色。
验证茄病镰刀菌感染是否激活PANoptosis和炎症反应。
通过Western blot、免疫荧光和TUNEL检测感染角膜中cleaved caspase-1、-3、-7、-8、cleaved GSDMD、p-MLKL的表达和细胞死亡;通过qPCR检测IL-6、IL-1β、TNF-α的表达。
揭示感染角膜中基因表达变化和免疫细胞浸润情况。
对4个感染和4个正常角膜进行RNA-seq,鉴定差异表达基因并进行通路富集分析。使用ImmuCellAI-mouse分析免疫细胞浸润。
研究DON对HCE-T细胞的毒性作用。
培养HCE-T细胞,用梯度浓度DON处理24小时,或用5 µM DON处理24或48小时。
评估DON对细胞活力、PANoptosis标志物和炎症因子的影响。
使用CCK-8检测细胞活力,Western blot和免疫荧光检测PANoptosis标志物,qPCR检测炎症因子,live/dead染色检测细胞死亡。
揭示DON诱导HCE-T细胞损伤的分子机制。
对DON处理(5 µM,24小时)和未处理的HCE-T细胞进行RNA-seq,分析差异表达基因和通路富集。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | 左氧氟沙星滴眼液 | Santen | -- |
| 聚维酮碘溶液 | Heng Jian | -- | |
| 细胞培养 | DMEM/F-12培养基 | Gibco | -- |
| 人表皮生长因子 | Sigma-Aldrich | E9644 | |
| 胎牛血清 | Gibco | A5669701 | |
| 青霉素/链霉素 | Thermo Fisher Scientific | 15140122 | |
| 胰岛素 | Sigma-Aldrich | I2643 | |
| 细胞活力检测 | 细胞计数试剂盒-8 | GlpBio | GK10001 |
| 蛋白质提取 | RIPA裂解液 | APExBio Technology | K1125 |
| 蛋白质定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Leagene | PT0001 |
| Western blot | 5×上样缓冲液 | Epizyme | LT101 |
| SurePAGE凝胶 | GenScript | M00665/M00719 | |
| 抗cleaved caspase-1抗体 | Thermo Fisher Scientific | PA5-105049 | |
| 抗cleaved GSDMD抗体 | Novus Biologicals | NBP2-33422 | |
| 抗cleaved caspase-3抗体 | Cell Signaling Technology | 9661T | |
| 抗cleaved caspase-7抗体 | Cell Signaling Technology | 9491T | |
| 抗cleaved caspase-8抗体 | Cell Signaling Technology | 8592T | |
| 抗p-MLKL抗体 | Cell Signaling Technology | 37333S | |
| 抗p-MLKL抗体 | Abcam | ab187091 | |
| 抗GAPDH抗体 | Proteintech | 10494-1-AP | |
| HRP标记二抗 | Bioss Antibodies | bs-0295G | |
| 增强化学发光底物 | Tanon Life Science | -- | |
| RNA提取 | EZ-Press RNA纯化试剂盒 | EZBioscience | B0004D |
| RNA浓度检测 | NanoDrop 2000分光光度计 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| cDNA合成 | 逆转录试剂盒 | Takara | RR036A |
| qPCR | SYBR Green qPCR试剂盒 | EZBioscience | A0012 |
| 免疫荧光 | 抗EMR1(F4/80)抗体 | Servicebio | GB113373 |
| 抗α-SMA抗体 | Servicebio | GB111364 | |
| TUNEL | 蛋白酶K | Beyotime | ST533 |
| TUNEL试剂 | Beyotime | C1088 | |
| 活/死细胞染色 | 活/死细胞染色试剂盒 | Beyotime | C2015 |
| 细胞处理 | 脱氧雪腐镰刀菌烯醇 | Sigma-Aldrich | D0156 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 小鼠品系、性别、年龄、体重、注射浓度、注射体积、注射途径 阅读提示:Methods 部分 'Establishment of a Mouse Corneal F. solani Infection Model' |
| 临床评分 | 评分系统、观察时间点 阅读提示:Methods 部分 'Clinical Scoring' |
| 细胞培养和DON处理 | 细胞系、培养基成分、DON浓度、处理时间 阅读提示:Methods 部分 'Cell Culture' 和 'Cell Counting Kit-8 Assay' |
| PANoptosis检测 | 抗体浓度、蛋白量、染色方法 阅读提示:Methods 部分 'Western Blotting' 和 'Immunofluorescence Assay' |
| 转录组分析 | 样本量、差异表达阈值、数据分析方法 阅读提示:Methods 部分 'RNA Sequencing and Analysis' |
| 统计方法 | 统计检验方法、显著性水平 阅读提示:Methods 部分 'Statistical Analysis' |