激光诱导CNV及视网膜下纤维化模型建立与RO处理
建立CNV和视网膜下纤维化模型并评估RO的体内治疗效果
使用532nm激光光凝诱导C57BL/6J小鼠产生CNV和视网膜下纤维化,激光诱导后1天玻璃体内注射RO或对照,在第3、7、14天取材检测。
RO4929097, a Selective γ-Secretase Inhibitor, Inhibits Subretinal Fibrosis Via Suppressing Notch and ERK1/2 Signaling in Laser-Induced Mouse Model
包含激光诱导CNV小鼠模型体内实验、ARPE-19和原代人RPE细胞体外实验,并进行了功能验证和机制验证(Notch、ERK1/2、Smad2/3)。
激光诱导CNV小鼠模型(C57BL/6J,7周龄和13月龄) ARPE-19细胞系 原代人RPE(phRPE)细胞
RO剂量:100 μM,1 μL玻璃体内注射 TGFβ1浓度:10 ng/mL处理RPE细胞 RO处理浓度:10-80 μM(体外) 检测时间点:激光诱导后第3、7、14天 动物品系和年龄:C57BL/6J小鼠,7周龄和13月龄
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立CNV和视网膜下纤维化模型并评估RO的体内治疗效果
使用532nm激光光凝诱导C57BL/6J小鼠产生CNV和视网膜下纤维化,激光诱导后1天玻璃体内注射RO或对照,在第3、7、14天取材检测。
比较RO处理组与对照组CNV和纤维化病变的大小
通过IB4和Collagen I免疫荧光染色,利用共聚焦显微镜获取z-stack,使用ImageJ软件进行3D重建和体积/面积定量。
验证EMT参与视网膜下纤维化,并检测RO对Notch信号的影响
免疫荧光观察RPE65、α-SMA和fibronectin共定位;Western blot检测RPE-脉络膜复合物中NICD和presenilin1的表达。
评估RO对TGFβ1诱导的RPE细胞EMT的抑制作用
用TGFβ1(10 ng/mL)处理ARPE-19或phRPE细胞,联合不同浓度RO(10-80 μM)孵育48小时,检测EMT标志物表达、细胞形态和功能。
验证RO对TGFβ1诱导的细胞活力、迁移和收缩能力的影响
采用MTT法检测细胞活力,Transwell迁移和划痕实验检测迁移,胶原凝胶收缩实验检测收缩功能。
阐明RO抑制EMT的分子机制,包括Notch与ERK1/2、Smad2/3、p38的关系
Western blot检测TGFβ1处理后Notch相关分子、ERK1/2、Smad2/3、p38的磷酸化水平;使用U0126、SB431542、Adezmapimod等抑制剂处理。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 药物处理 | RO4929097 | Selleck | S1575 |
| DAPT | Selleck | S2215 | |
| U0126-EtOH | Selleck | S1102 | |
| SB431542 | Selleck | S1067 | |
| Adezmapimod | Selleck | S1076 | |
| 细胞培养 | 重组TGFβ1 | ThermoFisher | PHG9214 |
| DMEM/F12培养基 | HyClone | 11330-032 | |
| 胎牛血清 | Yeasen | 40130ES76 | |
| 青霉素/链霉素 | Yeasen | 60162ES76 | |
| 蛋白提取 | RIPA裂解液 | Yeasen | 20101ES60 |
| 蛋白定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Yeasen | 20201ES76 |
| 细胞活力检测 | MTT | Yeasen | 40201ES72 |
| 细胞染色 | 结晶紫染色液 | Yeasen | 60506ES60 |
| Western blot | 抗Jag1抗体 | Abcam | ab7771 |
| 抗p-Smad2/3抗体 | Cell Signaling Technology | 8828 | |
| 抗Smad2/3抗体 | Cell Signaling Technology | 8685 | |
| 抗Notch1抗体 | Cell Signaling Technology | 3608 | |
| 抗NICD抗体 | Cell Signaling Technology | 4147 | |
| 抗DLL4抗体 | Cell Signaling Technology | 2589 | |
| 抗Hes1抗体 | Cell Signaling Technology | 11988 | |
| γ分泌酶抗体套装 | Cell Signaling Technology | 5887 | |
| 抗p-ERK1/2抗体 | Cell Signaling Technology | 4370 | |
| 抗ERK1/2抗体 | Cell Signaling Technology | 9107 | |
| 抗p-p38抗体 | Cell Signaling Technology | 9216 | |
| 抗p38抗体 | Cell Signaling Technology | 9212 | |
| Western blot/免疫荧光 | 抗纤连蛋白抗体 | Proteintech | 15613-1-AP |
| 抗I型胶原抗体 | Abcam | ab34710 | |
| 抗α-SMA抗体 | Abcam | ab7817 | |
| 抗ZO-1抗体 | Invitrogen | 61-7300 | |
| 免疫荧光 | 抗RPE-65抗体 | Abcam | ab13826 |
| Western blot | 抗GAPDH抗体 | Proteintech | 10494-1-AP |
| RT-qPCR | TRIeasy LS总RNA提取试剂 | Yeasen | 19201ES60 |
| cDNA合成预混液 | Yeasen | 11120ES60 | |
| SYBR Green预混液 | Yeasen | 11201ES03 | |
| Bio-Rad CFX Manager 2.1 检测系统 | Bio-Rad | -- | |
| 激光诱导模型 | 532nm激光 | Carl Zeiss Meditec | -- |
| 共聚焦显微镜 | Leica SP8共聚焦显微镜 | Leica | -- |
| 荧光显微镜 | Leica DMI3000显微镜 | Leica | -- |
| Western blot | Odyssey红外成像系统 | LICOR Biosciences | -- |
| Quantity One软件 | Bio-Rad | -- | |
| 免疫荧光 | 共聚焦显微镜LSM 710 | Carl Zeiss | -- |
| 图像分析 | ImageJ软件 | National Institutes of Health | -- |
| 统计分析 | GraphPad Prism 8.0 | GraphPad Software | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 激光诱导CNV模型 | 小鼠品系、年龄、性别;激光参数(波长、功率、持续时间、光斑数量);激光诱导后给药时间点;RO剂量和注射体积 阅读提示:Methods: Laser-Induced CNV Model and Animal Treatment |
| 体内RO处理 | RO浓度(100 μM)、注射体积(1 μL)、对照组(1% DMSO/PBS) 阅读提示:Methods: Laser-Induced CNV Model and Animal Treatment |
| 体外EMT模型 | 细胞系(ARPE-19、phRPE)及培养条件;TGFβ1浓度(10 ng/mL);RO浓度梯度(10-80 μM);处理时间(48小时);血清饥饿时间(12小时) 阅读提示:Methods: Cell Culture |
| 功能检测 | MTT实验的RO浓度和处理时间;Transwell迁移实验的细胞数、孔径、孵育时间;划痕实验的伤口宽度、测量时间点;胶原凝胶收缩实验的胶原浓度、细胞密度、凝胶形成时间 阅读提示:Methods: Scratch Assay, Transwell Migration Assay, Gel Contraction Assay |
| 机制研究 | 抑制剂浓度(U0126、SB431542、Adezmapimod为10 μM);预处理时间(1小时);检测时间点(Notch相关分子在12小时,ERK1/2在12小时,Smad2/3、p38在1小时) 阅读提示:Methods: Cell Culture, Results section 'RO Suppressed ERK1/2...' |