微针介导小鼠皮肤给药：操作指南+核心优势全解析

• 给药前 24h，用脱毛膏去除小鼠背部 2×3cm 范围毛发（毛发会影响微针与小鼠皮肤贴附紧密性，导致药物渗漏）；生理盐水轻柔清洁脱毛区域，重点检查皮肤是否有红肿、破损、炎症（若有异常，需更换小鼠或调整部位，避免影响小鼠皮肤药物吸收效率）；给药前 10min，通过异氟醚吸入麻醉（麻醉深度以小鼠无自主活动、呼吸平稳为宜），将小鼠固定于无菌操作台（背部朝上，暴露给药区域）。

•  

• 给药后将小鼠单独饲养，24 小时内每 6 小时观察一次小鼠皮肤给药部位反应（记录是否出现红肿、渗液、结痂，若红肿持续超 48 小时，需排查药物过敏或创口感染）；

•  

• 监测小鼠食欲、活动量、体重变化（评估微针给药对小鼠整体健康的影响，避免因动物状态异常导致实验数据偏差）；

•  

• 按实验设计检测指标（如通过高效液相色谱 HPLC 检测小鼠皮肤组织药物浓度，或免疫组化分析靶细胞响应，如毛囊再生、肿瘤细胞凋亡等）。

• 小鼠皮肤肿瘤研究：通过空心微针向黑色素瘤病灶递送阿霉素（化疗药），对比静脉注射组，可减少药物对小鼠肝脏、肾脏的毒副作用，提高小鼠肿瘤局部药物浓度（实验数据显示，微针组肿瘤抑制率提升 30%-40%）；

•  

• 小鼠雄激素脱发研究：可降解微针负载 17 型胶原蛋白 + 米诺地尔，靶向递送至 DHT 诱导的脱发区域，促进毛囊干细胞激活（免疫荧光检测显示，给药 2 周后小鼠毛囊密度增加 2 倍）；

•  

• 小鼠透皮递药机制验证：荧光标记药物（如 FITC - 胰岛素）通过微针递送，激光共聚焦显微镜观察药物在小鼠皮肤各层的分布，分析微针参数（长度、密度）对渗透速率的影响。

•  

• 大鼠模型：适用于大鼠皮肤创伤修复研究（微针递送表皮生长因子 EGF，加速创面愈合，实验显示创口愈合时间缩短 30%）、大鼠糖尿病皮肤并发症治疗（负载胰岛素的微针实现长效血糖控制，降糖效果维持 12 小时）；

•  

• 兔模型：因皮肤特性接近人类，用于兔皮肤刺激性测试（微针贴附后观察 24/48/72 小时皮肤反应，判断药物 / 设备安全性）、兔银屑病模型微针递药验证（递送糖皮质激素，评估抗炎效果及皮肤渗透深度）；

•  

• 小型猪模型：皮肤结构与人类高度一致，用于小型猪慢性创面微针递药研究（递送干细胞外泌体，评估创面愈合速度及组织再生质量）、微针设备临床前性能测试（验证微针贴附稳定性与药物递送一致性）。

•  

1. 微针参数匹配：根据研究目的调整 ——小鼠短期药物递送选不可降解微针（如金属微针），小鼠长效释药实验选可降解微针（如 PLGA、透明质酸微针）；针对小鼠腹部等薄皮肤区域，针头长度需≤300μm（避免穿透真皮层）。

2.  

3. 皮肤状态控制：脱毛后需等待 24 小时再给药（让小鼠皮肤恢复，减少脱毛膏残留刺激）；若皮肤有微小创口，需立即更换部位（防止药物通过创口直接入血，导致小鼠给药剂量失控）。

4.  

5. 剂量精准控制：液体制剂用 10μL/20μL 微量移液器定量（避免凭经验估算）；预实验阶段需通过 HPLC 检测小鼠皮肤内药物浓度，确定最佳给药剂量（如小分子药物单次给药量通常为 10-50μg，蛋白质药物为 5-20μg）。

6.  

7. 术后感染防控：给药后可给小鼠佩戴伊丽莎白圈（防止抓挠给药部位导致创口扩大）；若出现皮肤感染，需及时使用青霉素（5 万 U/kg，腹腔注射），同时评估抗生素对实验药物的干扰（避免影响小鼠实验结果准确性）。

统筹制作 | 深圳灵赋拓普生物科技有限公司