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        Western

        相关实验:蛋白质免疫印迹(Western Blot,WB)

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        愁毕业的崇

        请问Western 图这样子的是什么原因,目的条带应该在55左右,但是有好多杂带,而且空白对照也有条带,红色框是空白对照。背景非常不干净,该怎么解决呀。非常着急,大家有知道的吗?

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        4 个回答

        user-title

        loveliufudan

        有帮助

        Western blot分析中出现背景干扰和非特异性条带通常是由以下几个原因引起的:

        细胞裂解不充分:如果没有彻底裂解细胞,残留的细胞组分可能会与检测目标交叉反应,导致非特异性条带和背景信号增强。

        靶蛋白含量过低:如果目标蛋白含量太低,可能无法被充分检测到,从而导致非特异性条带和背景信号增强。

        抗体特异性不佳:如果使用的抗体与非特异性结构类似的蛋白结合,可能会引起交叉反应,导致非特异性条带和背景信号增强。

        次要抗体或检测系统问题:使用次要抗体或检测系统的过程中,可能会引入非特异性抗体或其他的污染物,导致背景信号增强。

        为了解决这些问题,可以考虑以下几个步骤:

        确认细胞裂解充分:可以在裂解液中加入蛋白酶抑制剂、磷酸酯酶抑制剂等,以确保裂解液中的蛋白质不会被降解。

        调整载体和表达条件:可以尝试改变载体、细胞株、诱导剂、感染剂等条件,以提高目标蛋白的表达量。

        优化抗体选择和检测系统:可以尝试使用特异性更好的一抗和次抗,以及更清洁的检测系统,如使用新鲜的卡西酮-胰酶和高质量的试剂盒等。

        优化免疫印迹实验条件:可以尝试优化电泳条件、转膜条件、封闭液和洗涤液的配方、检测时间和温度等,以降低背景信号和非特异性条带的出现。

        总之,针对Western blot出现的背景干扰和非特异性条带问题,需要逐一排查可能的原因,并针对性地优化实验条件,才能得到准确的结果。

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        sswei

        有帮助

        发光液配置时间过长同样会引起发光效果不好,背景脏或者漆黑一片。

        二抗孵育的时间不宜过长,一般是室温下摇床孵育 1 到 2 小时,抗体孵育完成后要清洗干净,特别是二抗孵育完成后,否则可能导致显影结果出现高背景。

         

        user-title

        土井挞克树

        有帮助

        提高抗体的特异性,减少非特异性背景结合

        user-title

        balalaLy

        有帮助

        可能是多克隆抗体,会有杂带。降低一下抗体浓度。

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