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        关于融合蛋白纯化的问题?

        相关实验:免疫球蛋白纯化技术

        user-title

        lyang556

        我做融合蛋白纯化的时候,用助溶剂溶解后做了GST亲和层析,然后用蛋白酶切割后却发现目的蛋白没有活性。不知道是什么原因?

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        2 个回答

        user-title

        Amor良

        有帮助

        1、操作尽可能置于冰上或者在冷库内进行。

        2、不要太稀,蛋白浓度维持在μg/mL~mg/mL。

        3、合适的pH,除非是进行聚焦层析,所使用的缓冲溶液pH避免与pI相同,防止蛋白质的沉淀。

        4、使用蛋白酶抑制剂,防止蛋白酶对目标蛋白的降解;在纯化细胞中的蛋白质时,加入DNA酶,降解DNA,防止DNA对蛋白的污染。

        5、避免样品反复冻融和剧烈搅动,以防蛋白质的变性。

        6、缓冲溶液成分尽量模拟细胞内环境。

        7、在缓冲溶液中加入0.1~1mmol/L DTT(或β-巯基乙醇),防止蛋白质的氧化。

        8、加1~10mmol/L EDTA金属螯合剂,防止重金属对目标蛋白的破坏。

        9、使用灭菌溶液,防止微生物生长。

        user-title

        bqejjh123

        有帮助

        可以加点甘油或者乙二醇降低极性,这样溶解就会好得多,此外也直接加2%得PEG这样也降低极性,同时保护蛋白,再做纯化就可以了,以前遇到这样得蛋白是用10%得乙醇加3-5%得PEG5000,这样得情况下蛋白还是活性回收率很高,那些表面活性剂能不用还是不用得好,失去活性可以监测一下提取,纯化,酶切到底哪里失去了活性,这样更容易解决你得问题。

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