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        请问为什么我提蛋白的时候蛋白浓度总是很低?

        相关实验:蛋白质免疫印迹(Western Blot,WB)

        user-title

        dxy_4z2a45ow

        本人做 wb 几个月了,之前一直在做小鼠组织的 wb,蛋白浓度一直都在 10mg/ml 以上。目前接触细胞已经快两个月了,提了五六次蛋白,最高的浓度只试过在 4mg/ml,通常都是 1~2。硬着头皮做了两三次 wb,有条带但是趋势完全不对,而且十分随机,没有可重复性。(本人已经做过 MTT 摸过条件之类的了) 我做的是 ges-1 细胞 大致方法:六孔板,细胞贴壁十二小时,开始处理。 使用的是 ripa 强裂解液,在使用前加入 pmsf 使其浓度浓度最终为1mM。 细胞先吸去培养液后用预冷过的pbs洗三遍,每孔加入 ripa(含pmsf)150ul,在冰上裂解 40min,期间不停晃动。挂下,取至1.5ml 离心管,13200rmp,20min 离心后取上清。 最后用bsa法测蛋白浓度。(离心之后感觉沉淀很少) 请问是哪个步骤错了还是有可以改进的地方呢。之前试过用培养皿培养细胞,加 200ul 的裂解液,浓度还是很低。简直要崩溃了
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        1 个回答

        user-title

        joson12345

        有帮助
        可以少加RIPA,或者把贴臂细胞消化下来后取细胞沉淀再加裂解液,看能否提高浓度,能杂出条带就有希望,每次都做内参,同一张膜做,看下趋势是否还是随机。
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