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        电转感受态大肠杆菌如何制备,电转流程是什么,其过程需要注意什么细节

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        dxy_tzlxjjy

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        3 个回答

        user-title

        sswei

        有帮助

        制备电转感受态大肠杆菌步骤:

        1.挑选一个大肠杆菌菌落,并将其接种在20mL LB培养基中,并在37°C振荡培养过夜。

        2.以1%的接种量接种20mL LB培养基,并在37°C下以230 rpm的转速摇动3小时。

        3.取1ml培养物,冰浴30分钟,在4℃以4,000 r / min离心3分钟,然后除去上清液。

        4.加入500 ul冰冷的0.1 mol / L CaCl 2溶液,重悬细菌沉淀,在4℃以4,000 r / min的速度离心3分钟,然后除去上清液。

        5.添加100ul体积的冰冷的0.1 mol / L CaCl 2溶液,重悬细菌沉淀,在4°C下以4,000 r / min离心4分钟,然后除去上清液。

        6.50 ul体积的冰冷的0.1 mol / L CaCl 2溶液,将细菌沉淀重悬在冰浴中3 h-24 h,即大肠杆菌感受态细胞。

        大肠杆菌感受态的制备注意事项,具体有以下几个方面:

        第一、在整个实验操作的过程当中,所使用的试管、枪头、离心管、量液器等器皿及用具都要在无菌的条件下进行,要求在高压条件下灭菌处理;

        第二、在实验过程中,注意所有应用的试剂、DNA酶都不能与其他的试剂相混淆,防止互相交叉感染,以免影响转化的效果;

        第三、用于制备感受态细胞的菌液,最好是从零下20℃或零下70℃保存的菌液当中直接转接;

        第四、不要用储存在4℃的培养菌液,或者已经多次转接、用过的培养菌液,要注意细胞的生长状态和密度。

        user-title

        loveliufudan

        有帮助

        以下是制备电转感受态大肠杆菌的步骤和注意事项:

        1.步骤:

        选择感受态大肠杆菌菌株。一般常用的感受态大肠杆菌菌株包括DH5α、TOP10、BL21等,其中DH5α是最常用的一种。

        制备电转用菌种。将感受态大肠杆菌菌种在LB培养基上进行前处理,一般情况下需要生长至对数期,细胞浓度应控制在1×10^8 ~ 1×10^9 cfu/mL。菌种的生长条件可以根据菌株特性进行调整。

        收获细胞。在对数期细胞中离心收获,用冷电解质缓冲液(如PBS)洗涤细胞2~3次,最后以PBS调节细胞密度至1×10^10 cfu/mL,备用。

        制备DNA。根据需要制备目标DNA,可以采用PCR扩增、酶切、纯化等方法。

        进行电转。将目标DNA与感受态大肠杆菌菌株共转化,常用的电转操作步骤包括以下几个方面:

        预冷电击电极和电击缸

        在冰上将转化混合物加入电击缸中

        进行电击(一般为2000V,25uF,200Ω,25ms)

        在加入1mL SOC培养基中恢复电转菌株

        在LB固体培养基上进行分离筛选

        2.注意事项:

        选择合适的感受态大肠杆菌菌株,根据实验需要进行筛选。

        菌株的处理和收获细胞的过程中,需要注意无菌操作,避免外源污染。

        在进行电转操作前,要仔细调整电击电极和电击缸的温度,确保电极温度低于-70℃。

        转化混合物的组成要严格控制,合理的浓度比例能够提高电转效率和转化成功率。

        进行电击的时间和电压要准确掌握,避免对细胞造成不可逆损伤。

        菌落分离和筛选过程中,要注意无菌操作,避免多个菌株交叉污染。可以在选择菌株时,根据菌落的形态、大小、颜色、透明度等特征进行判别和筛选,避免误选或漏选。

        电转过程中需要用到的所有试剂、介质等物品都需要提前准备好,避免操作时出现断料或者延误时间等情况。

        在转化后的菌落分离和筛选过程中,可以使用含有适当抗生素的LB固体培养基来筛选目标菌株,提高筛选的特异性和敏感性。

        在进行电转操作时,需要注意安全问题,例如佩戴手套、口罩等防护用品,避免电击操作对人体造成危害。

        user-title

        土井挞克树

        有帮助

        电转态大肠杆菌制备流程:

        [
        1.将大肠杆菌TG1种到基本培养琼脂板,37℃过夜。

        2.将基本培养琼脂板上的大肠杆菌TGl再接种到含有15m1 2XTY培养基的100ml形瓶中。37℃振荡培养过夜。

        3.用5ml夜培养的TGl接种到两个含500m1 2×Y培养基的2L有挡板锥形瓶中。在摇床中培养约1.5小时,直到A600接近0.5。

        4.将菌液转移4个预冷离心瓶中(约250ml/瓶)。平衡后,置于冰上20分钟。

        5.以3000g,4℃离心15分钟。使用前预冷所有转头。

        6,弃去上清,并以起始体积的冰冷lmmol/L Hepes溶液(约250m1)重悬每个锥形瓶中的细胞。所有溶液都应当新鲜配置。

        7.再次以3000g,4℃离心15分钟。

        8.以一半起始体积的冰冷lmmol/L Hepes溶液(约125ml)重悬每个锥形瓶中的细胞;此时可合并到两个离心瓶中。

        9.再次以3000g,4℃离心15分钟。

        10.以总体积为20m1的10%甘油和lmm01/L Hepes混合液重悬所有细胞。

        11.再次以3000g,4℃离心15分钟。

        12.如果细胞不是新鲜使用而是储存,则需准备乙醇/干冰浴。

        13.以总体积为2m1的10%甘油重悬细胞。

        14.使用新鲜制备的细胞,或者用干冰浴等量分装冻存细胞②。在检测效率后,及时使用细胞(在1周内)。

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