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        类器官培养与应用——肠类器官

        近岸蛋白

        1186

        肠上皮是成年哺乳动物中自我更新最快的组织,平均自我更新时间少于 5 天。

        肠干细胞位于肠隐窝(intestinal crypt)底部附近,每个隐窝中的干细胞大约有 4-6 个,它们产生快速增殖的转运扩增 (TA) 细胞,肠细胞、杯状细胞和肠内分泌细胞都从 TA 细胞发育而来。

        TA 细胞快速分裂、转运扩增的子细胞占据了隐窝的其余部分,并流向绒毛的侧面,在那里它们分化、吸收营养,最终在绒毛尖端凋亡1

        在体外可以由 hPSCs 来模拟胚胎肠发育的过程,通过添加高浓度的 FGF4 和 Wnt3A,促使 hPSCs 衍生的终内胚层 (DE) 向中肠和后肠内胚层分化,并促进肠管样形态发生,进而产生包含吸收性肠细胞以及主要分泌谱系(包括 Paneth 细胞、杯状细胞和肠内分泌细胞)的肠类器官。

        本篇文章基于 Nature protocols2整理了 hPSCs 细胞来源的肠类器官培养方案。

         

        细胞来源

        hPSCs

         

        培养基配方

         

        第 1 天内胚层分化培养基

        第 2 天内胚层分化培养基

        第 3 天内胚层分化培养基

        中肠和后肠分化培养基

        肠生长培养基

        近岸蛋白产品货号

        基础培养基

        RPMI-1640

        RPMI-1640

        RPMI-1640

        RPMI-1640

        DMEM-F12

         

        penicillin-streptomycin

        penicillin 100U/ml, streptomycin 100μg/ml

         

        dFBS(v/v)

        -

        0.2%

        2%

        2%

        -

         

        L-glutamine

        2mM

         

        B-27

        -

        -

        -

        -

         

        HEPES

        -

        -

        -

        -

        15mM

         

        Activin A

        100ng/ml

        100ng/ml

        100ng/ml

        100ng/ml

        -

        C687

        FGF-4

        -

        -

        -

        500ng/ml

        -

        CR08

        Wnt3a

        -

        -

        -

        500ng/ml

        -

        C06D/C18K

        Noggin

        -

        -

        -

        -

        100ng/ml

        CB89

        R-spondin 1

        -

        -

        -

        -

        500ng/ml

        CX83

        EGF

        -

        -

        -

        -

        100ng/ml

        C029

         

        hPSCs培养和传代

        1、将冻存的 Matrigel 在 4°C 下过夜解冻,在 6 孔板的每孔滴加 1ml 冷的 Matrigel,旋动 6 孔板使 Matrigel 溶液分布均匀。随后转移至 37℃ 条件下孵育 10min 使其凝固,使用前需室温静置 1h。

        2、将 hPSCs 接种在包被 Matrigel 的 6 孔板中,每孔加入 3ml mTeSR1,放置在 37℃,5%CO2 的培养箱中,培养至细胞融合度约为 75–85%、且大部分无分化的状态时,吸出培养基。

        3、向 hPSCs 中加入 1 ml Dispase(1mg/ml),并将培养皿放置在 37℃ 条件下进行解离,直到所有的细胞都以小细胞块或单细胞的形式漂浮。向每个孔中加入 5ml的DMEM-F12,以充分稀释 Dispase。

        4、将所有细胞转移至离心管中,室温下 300g 离心 3min,收集沉淀细胞。加入 DMEM-F12 培养基,以 1:6 的比例接种在 Matrigel 包被的 24 孔培养板中,向每个孔中加入 0.5ml 预热的 mTeSR1 进行培养,在 2-4 天内细胞汇合度达到 85-90%。

         

        hPSCs 分化成 DE

        5、吸出 mTeSR1,向每个孔中加入 5ml 预热的第 1 天内胚层分化培养基,并将平板放回 37℃,5%CO2 的培养箱中。

        6、24h 后,吸出第 1 天内胚层分化培养基,替换为每孔 5ml 预热的第 2 天内胚层分化培养基,并将平板放回 37℃,5%CO2 的培养箱中。

        7、24h 后,吸出第 2 天内胚层分化培养基,替换为每孔 5ml 预热的第 3 天内胚层分化培养基,并将平板放回 37℃,5%CO2 的培养箱中。

        8、24h 后,吸出第 3 天内胚层分化培养基,用不含 Activin A 的第 3 天内胚层分化培养基洗涤细胞一次。此时在显微镜下观察细胞,应该存在扁平的 DE 组织,该组织包含非常少的 3D 结构。

         

        DE 分化为中肠和后肠

        9、从 24 孔板中吸出培养基,每孔滴加 5ml 预热的中肠和后肠分化培养基。每 24h 更换一次新鲜中肠和后肠分化培养基,直至 96h 。

        10、在立体显微镜下,可以看到明显的 3D 结构。使用 200μl 移液器吸头从每个孔中收集球状体,并将大约 50 个球状体集中到 5ml 微量离心管中。

         

        中肠和后肠球状体生长成人肠类器官

        11、收集球状体后,将微量离心管垂直放置在管架上 10min,此时球体通过重力沉降到离心管底部。吸出上清,控制总体积在 25μl 左右。

        12、将冻存的 Matrigel 在 4℃ 下过夜解冻,添加 B-27 补充剂(终浓度 1×)、R-spondin1 (终浓度 500ng/ml),Noggin (终浓度100ng/ml) 和 EGF (终浓度100ng/ml),用移液器吹打混匀,配制成肠基质胶。

        13、将球状体滴加在预冷的肠基质胶中,并将样品混匀,总体积将达到 75μl (50μl 基质胶+ 25μl 培养基+球状体)。

        14、将混合物接种在 4 孔板中,注意需接种在孔的中心,避免接触侧壁。

        15、将 4 孔板放入 37℃,5%CO2 的培养箱中孵育 10min,使 Matrigel 固化。

        16、向每个孔中缓慢滴加 5ml 肠道生长培养基,确保基质胶被完全覆盖。

        17、每隔 4 天,或当培养基中的酚红变黄时,更换肠生长培养基。

         

        肠类器官传代

        18、在第 14 天左右,通过将肠类器官重新包埋在新鲜的 Matrigel中,来实现传代。

        19、在显微镜下观察类器官,吸出孔内的培养基,加入少量 DMEM-F12 培养基。

        20、使用 200μl 移液器吸头用力上下吹打 Matrigel 3-5 次,释放 Matrigel 中的类器官。

        21、在 37℃,5%CO2 的培养箱中培养组织 14 天,每 4 天更换一次肠道生长培养基。

        类器官培养与应用——肠类器官

        图1. 人肠类器官的培养过程2

         

        肠类器官的最新应用进展

        肠道类器官可以在体内移植,作为再生医学的临床前工具。

        2022 年 2 月日本学者 Satoshi Watanabe 等人3利用右旋糖酐硫酸钠给药,在结肠远端引发上皮损伤,随后将肠道类器官原位移植到受体小鼠的结肠中,实现了上皮细胞的重建。

        这一步骤可在 10 分钟内完成,为肠类器官治疗溃疡性结肠炎的临床试验奠定了基础。

        类器官培养与应用——肠类器官

        图2. 肠类器官(绿色)在移植 1 周后,成功整合到小鼠上皮损伤的区域3

         

        参考文献

        【1】SATO, Toshiro, et al. Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature, 2009, 459.7244: 262-265.

        【2】MCCRACKEN, Kyle W., et al. Generating human intestinal tissue from pluripotent stem cells in vitro. Nature protocols, 2011, 6.12: 1920-1928.

        【3】WATANABE, Satoshi, et al. Transplantation of intestinal organoids into a mouse model of colitis. Nature Protocols, 2022, 1-25.

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