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        cDNA文库组标准流程二:mRNA的分离

        互联网

        1786

         

        1.Oligotex mRNA Kits  (QIAGEN )法

         准备工作:

        1.将Oligotex Suspension 置于37℃水浴中,旋转混匀,溶解Oligotex.,然后置于室温。

        2.将OBB Buffer置于37℃水浴中,旋转混匀,重溶沉淀物,然后置于室温。

        3.将OEB Buffer 置于70℃水浴中,待用。

         

        试验步骤:

         

        表3:加入试剂量据此表

        Total RNA

        RNase-free Water to:

        Buffer OBB

        (ul)

        Oligotex

        Suspension  (ul)

        Prep size

        <=0.25mg

        250ul

        250ul

        15

        Mini

        0.25-0.5mg

        500ul

        500ul

        30

        Midi

        0.5-0.75mg

        500ul

        500ul

        45

        Midi

        0.75-1.00mg

        500ul

        500ul

        55

        Midi

         

        1.      Total RNA 量不要多于1mg,用移液器取出所需RNA量到1.5ml离心管中,加RNase-free water 补足到500ul

        2.      根据表3加入适当体积的OBB Buffer和Oligotex Suspension, 轻弹1.5ml离心管彻底混匀

        3.      置于70℃水浴中3min

        4.      取出置于室温(20℃-30℃)10min

        5.      13000rpm室温离心 2min,用移液器吸出上清到一个新的1.5ml离心管中,保留上清直到polyA被结合上。

        6.      用移液器取400ul OW2 Buffer混匀沉淀物,将混合物转移到 Spin Column中,RT ,13000rpm,离心1min

        7.      将Spin Column 转移到一个新的1.5ml离心管中,加400ul OW2,RT,  13000rpm,离心1min

        8.      将Spin Column 转移到一个新的1.5ml管中,取出25ulOER Buffer(70℃)到Column中,用移液器吹打3-4次树脂,室温 13000rpm,离心1min。

        9.      取出25ul OER Buffer(70℃)到Column中,用移液器吹打3-4次树脂,室温 13000rpm,离心1min。

        10.  测OD,并电泳定量。

        2. 磁珠法分离 mRNA

        1. 在RNase-free的Eppendorf 管中加入0.1~1.0mg的总RNA和RNase-free水至终体积为500ul.

        2.  65ºC加热10分钟。

        3. 加入3ul生物素标记的Oligo(dT)和13ul 20×SSC于RNA中,轻轻混合,室温放置逐渐冷去至室温,一般需10 分钟左右。

        4. 同时配0.5×SSC 1.2ml和0.1×SSC 1.4ml.

        5. 将磁珠(SA-PMPs)轻晃散开,放入磁性分离架上,使SA-PMPs集中于管的一侧(约30sec),小心去上清,切不可离心。用0.3ml 0.5×ssc漂洗SA-PMPs,用磁性分离架集中磁珠,去除上清,重复3次。

        6. 将漂洗后的SA-PMPs重新悬浮于0.1ml 0.5Xssc,注意漂洗后的SA-PMPs应在30分钟内使用。

        7. 将(3)中的oligo(dT)/mRNA退火反应物全部加入含漂洗好的SA―PMPs管中,轻轻摇匀,室温下放10 分钟。

        8. 用磁性分离架捕获SA-PMPs,小心去上清,但不要弃去。

        9.    用0.1×SSC,每次0.3ml洗3次,每次都晃至SA-PMPs悬浮,最后一次漂洗后尽可能多的吸取水相,而不损坏SA-PMPs.

        10.将SA-PMPs重新悬浮在0.1ml RNase-free水中,反复颠倒,使SA-PMPs散开,洗脱mRNA。

        11.用磁性分离架捕获SA-PMPs,将洗脱的mRNA吸入另一个新的Eppendorf管中。

        12.将SA-PMPs再悬浮于0.15ml RNase-free的水中,洗脱,与(11)步洗脱液合并。

        13.将得到的mRNA溶液取几微升跑电泳,若mRNA浓度不足以进行下一步的反转录,则需将得到的mRNA溶液浓缩(浓缩步骤见14-18)。

        14.加0.1体积的3mol/l NaAc和1.0体积的异丙醇于洗脱液中,-20ºC沉淀过夜。

        15.4ºC,13000g离心60 分钟。去上清,加入500ul 70%乙醇混匀。

        16.4ºC,7500g离心10 分钟。

        17.去上清,真空或空气中自然风干,但不要太干,加适量RNase-free水溶解。

        18.重复步骤5-12,将步骤8保留下的样品重新上柱

        注意事项:

        1.所有操作均需要严格戴手套,戴口罩进行

        2.如果total RNA质量高,杂质少,就选择Oligotex的方法分离mRNA,相反则可以用磁珠法。

        3.mRNA的电泳图是smear。

         

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