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        【原创】莱枫-血清/血浆游离DNA提取试剂盒

        丁香园论坛

        3926

        上海莱枫生物科技有限公司 网址:www.lifefeng.com

        订货电话:021- 64810180,25966877 传真:021-54252754

        技术解答:shanghai@lifefeng.com 技术支持:400-600-1087,13817902990(上海)

        各位战友如有需要我们可提供4次免费试用装

        个人认为彻底去除细胞DNA是实验可重复性的关键,后续PCR添加BSA或Carrier DNA或增强剂是非常有必要的。

        我们旨在提供一种更方便、快速和稳定的提取方法,没有文献或者公司产品支持游离DNA可电泳观察,虽然我们做到了,这也是锦上添花的事,因为现有的检测方法完全可以实现更微量核酸的检测工作。

        血清/血浆游离DNA提取试剂盒 Cat#DK606

        游离DNA(或称循环DNA,以下简称cfDNA)是一种无细胞状态的、片段化的胞外DNA,存在于血液、滑膜液和脑脊液等体液中。cfDNA在正常人的血液中含量甚微,平均值为13 ng/ml[1],而当机体在一些特殊状态时(如患有肿瘤、自身免疫性疾病、感染性疾病、中风、心肌梗死及妊娠等),其含量明显上升,比如恶性肿瘤患者平均值达到180ng/ml[1]。

        cfDNA含量少,而且高度片段化,提取cfDNA往往成为后续实验成败的关键。DK606是针对cfDNA的特点而设计的,适合从≤5ml血清或者EDTA-K2(或Na2)抗凝方式的血浆中提取DNA,具备以下特点:

        富集DNA,避免反复过柱

        样品中加入等体积DNA富集试剂,使DNA与少量蛋白形成容易被离心沉淀的复合物,≤2ml样品只需过柱结合一次,2-5ml样品过柱结合2次。平行处理4个体积为1ml的样品,可在30分钟内完成提取工作。

        回收率约50%,可电泳观察

        我们优化了DNA与硅胶材料的结合方式,不添加carrier RNA/DNA的条件下避免硅胶材料不可逆吸附核酸造成的损失,cfDNA回收率约50%,高于文献THP(Triton/Heat/Phenol protocol)的回收率(38.7%)[2]。

        ≥0.5 ml样品最终20 μl洗脱,5 μl电泳即可观察到核小体单位的143 bp片段,可作为估算cfDNA含量的依据。

        解决长时间冻存的血浆样品中血纤维影响产量和纯度的问题

        血浆长时间冻存或者反复冻融后产生血纤维,大量血纤维会影响cfDNA产量和纯度。cfDNA以某种方式附着或者结合于血纤维,因此不能简单离心去除血纤维。我们优化的方法能使cfDNA与血纤维分离,方便离心去除血纤维,并且能去除大部分可能残留的细胞DNA(见图2、3)。

        cfDNA提取与后续实验的建议

        1. 血清和血浆都可以用于提取cfDNA,普遍认为血液在凝固过程中发生凋亡释放DNA到血清中,因此从血浆中提取cfDNA更能反映生理或者病理状态。

        2. 推荐使用EDTA-K2作为抗凝剂分离血浆。

        3. 推荐2次离心的方法分离血浆[3]:1600g离心10min分离血浆勿触动白膜层,16,000g离心10min仔细吸取上清。

        4. cfDNA量极少,后续PCR(包括Realtime PCR)应考虑高温条件下反应管表面对核酸的吸附和破坏作用。提取方法中加入carrier RNA/DNA最终存在于提取的cfDNA中,对后续PCR是有利的,但carrier RNA容易水解和降解可能会影响实验的重复性。

        BSA对塑料表面有屏蔽作用,大部分公司提供的PCR试剂中已含有一定量的BSA(终浓度约0.008%),我们建议在PCR体系中再添加BSA至终浓度0.1%;或者添加carrier DNA至终浓度0.5-5ng/μl;或者添加5×PCR Enhancer II (Cat#PR312)。

        Carrier DNA可以是已知序列的基因组DNA、质粒DNA或者PCR产物,carrier DNA与检测引物不能与有稳定配对区域,比如检测癌突变序列可以使用正常组织或者血液中提取的DNA作为carrier DNA。对PCR的增强效果,添加Carrier DNA优于添加5×PCR Enhancer II ,优于添加BSA。

        参考文献

        1. Gormally E, Hainaut P, Caboux E, et al. Amount of DNA in plasma and cancer risk: aprospective study. Int J Cancer 2004;111:746–9.

        2. Xiaoyan Xue, et al. Optimizing the yield and utility of circulating cell-free DNA from plasma and serum. Clinica Chimica Acta 2009;404:100–04.

        3. Rossa W. K. Chiu, et al. Effects of Blood-Processing Protocols on Fetal and Total DNA Quantification in Maternal Plasma. Clin Chem 2001; 47: 1607–1613

        以下图1-4说明:

        Marker为Marker I (100-600 bp)稀释10倍,M1表示1μl,M2表示2μl,M3表示3μl。以M1为例400bp为加亮条带图中为2ng,其余条带为1ng;

        样品洗脱体积为20 μl,电泳体积5μl;

        电泳条件:1×TAE,1.5%agarose, 6.7V/cm电泳15min;

        Bio-rad凝胶成像系统拍摄。

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