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        如何减少免疫组化的背景染色?

        丁香园论坛

        4390

        如何减少免疫组化的背景染色?

        我做的是大鼠肾脏 MMP-9 和 PAI-1 的免疫组化染色。MMP-9 为山羊抗鼠的,PAI-1 为兔抗鼠的,均为中山公司产品。选用中山公司相应的二抗试剂盒。反复做了好几批片子可结果总是不尽如人意,背景颜色比较深,难以判断阳性结果。

        具体步骤如下:

        1、石蜡包埋组织切片 4μm,用的是中山公司的多聚赖氨酸防脱片的玻片,捞片后置 60℃ 烤箱烤片 2-4 小时。

        2、半月后,脱蜡水化

        3、PBS 液冲洗,3 分钟×3;

        4、切片置于 1%triton-x-100 液中 37℃ 温浴 10 分种;

        5、PBS 液冲洗,3 分钟×3;

        6、每张切片加 1 滴(50?l)过氧化酶阻断溶液,室温孵育 15 分钟,以阻断内源性过氧化物酶的活性;

        7、PBS 液冲洗,3 分钟×3;

        8、枸橼酸盐修复液冲洗,3 分种×2;

        9、微波修复抗原(枸橼酸盐修复液微波高火加热至沸腾,放入切片,中低火维持沸腾 8-10 分种,自然冷却至室温);

        10、PBS 液冲洗,3 分钟×3;

        11、滴加 1 滴(50 ul)正常非免疫动物血清,室温孵育 20 分钟(阻滞非特异性染色);

        12、弃去血清,滴加一抗(PBS 液稀释一抗、说明书推荐 1:50-1:500,故取浓度 1:200),置湿盒内 37℃ 孵育 1 小时;

        13、PBS 液冲洗,3 分钟×3;

        14、滴加 1 滴(50?l)第二抗体,室温下孵育 10 分钟;

        15、PBS 冲洗,3 分钟×3;

        16、滴加 1 滴(50 ul)链霉菌抗生物素—过氧化物酶溶液,室温下孵育 10 分钟;

        17、PBS 冲洗,3 分钟×3;

        18、滴加 2 滴(100?l)新鲜配制的 DAB 溶液,显微镜下观察 1-3 分钟,呈棕黄色为止;

        19、自来水充分冲洗;

        20、苏木素复染 1 分种,自来水充分冲洗;

        21、梯度酒精脱水,二甲苯透明,中性树脂封片。

        以上过程均保持湿润,每一步都严格按照以上步骤进行。

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