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        NK 细胞培养操作流程(PBMC 来源的 NK 细胞的扩增方案)

        相关实验:传代细胞培养

        最新修订时间:

        材料与仪器

        材料: NK 细胞、NKT 细胞、rhIL-2、 rhIL-18、 rhIL-21、PRIME-XV NK Cell CDM、细胞计数仪、离心管、离心机、磁珠、流式细胞仪、移液器、移液管、二氧化碳培养箱

        步骤

        活化和扩增培养基的制备

        1. 通过添加以下推荐浓度的细胞因子:500 IU/mL 的重组人 IL-2 (rhIL-2)、10 ng/mL 的 rhIL-12、10 ng/mL 的 rhIL-18 和 10 ng/mL 的 rhIL-21,为每 1x106 个富集的 NK 细胞制备 1 mL 的接种培养基(PRIME-XV NK Cell CDM)。

        2. 通过将步骤 1 中细胞因子的相对浓度翻倍,为每 1x106 个富集的 NK 细胞制备 50 mL 的 2x 扩增培养基(PRIME-XV NK Cell CDM),具体浓度如下:1000 IU/mL 的重组人 IL-2 (rhIL-2)、20 ng/mL 的 rhIL-12、20ng/mL 的 rhIL-18、20 ng/mL 的 rhIL-21。

        NK 细胞的准备

        3. 使用前,将足够量的 PRIME-XV NK Cell CDM 在 37˚C 预热至少 15 分钟。

        注意:为避免多次加热降温,请在预热前确定所需的总体积。

        4. 冻存的细胞:在 37℃ 的水浴中轻轻搅拌 1 分钟使细胞解冻。

        • a. 小心地将冻存管全部内容物转移到 15 mL 的锥形管中,其中预先加入 10 mL PRIME-XV NK Cell CDM。
        • b. 取样计算细胞数。将细胞以 300 g 离心 5 分钟。
        • c. 小心吸去上清液,留下最小体积的培养基覆盖细胞沉淀。

        5. 新鲜细胞: 小心地将全部内容物转移到 15 mL 锥形管中,其中含有 10 mL PRIME-XV NK Cell CDM。

        • a. 取样计算细胞数。将细胞以 300 g 离心 5 分钟。
        • b. 小心吸去上清液,留下最小体积的培养基覆盖细胞沉淀。

        6. 如果使用完整的 PBMCs,使用磁珠或者使用流式细胞仪富集 NK 细胞。

        • a. 阳性分选:富集 CD56+ 细胞。
        • b. 阴性分选:去除 CD3+ 细胞。
        • c. 可按需采用多种富集方法。
        • d. 取样计算细胞数。将细胞以 300 g 离心 5 分钟。
        • e. 小心吸去上清液,留下最小体积的培养基覆盖细胞沉淀。

        7. 使用流式细胞术检测细胞表型(是否存活、CD3、CD56、CD16)。

        • a. 如果富集 NK 细胞,请对比富集前后的样本。

        NK 细胞培养设置

        8. 以 0.5 x 106 NK cells/mL 的密度在 1x 的接种培养基(步骤 1)中重悬细胞沉淀。

        9. 根据具体应用正确活化细胞。FISI 的研发团队使用的是市售的活化磁珠。

        10. 以 2 mL 的体积将活化的细胞和细胞因子混合物分装于 T-25 培养瓶内,在正常组织培养条件下垂直培养。

        • a.37˚C 、5% CO2、加湿环境的培养箱。
        • b. 最多培养 14 天。

        11. 每隔 2~3 天补充 2x 的扩增培养基(步骤 2)使培养体积加倍。

        • a. 可以将细胞转移到更大工作体积的容器中,以适应两周内培养体积的增加。
        • b. 每次补充培养基时,评估活细胞密度、细胞活率和流式细胞术表型。
        • c. 不需要在两次补充培养基操作期间对细胞进行离心处理。

        NKT 细胞的准备

        1. 使用前,将足够量的 PRIME-XV NK Cell CDM 在 37˚C 预热至少 15 分钟。

        注意:为避免多次加热降温,请在预热前确定所需的总体积。

        1. 冻存的细胞:在 37℃ 的水浴中轻轻搅拌 1 分钟使细胞解冻。
        • 小心地将冻存管全部内容物转移到 15 mL 的锥形管中,其中预先加入 10 mL PRIME-XV NK Cell CDM。
        • 取样计算细胞数。将细胞以 300 g 离心 5 分钟。
        • 小心吸去上清液,留下最小体积的培养基覆盖细胞沉淀。

           3. 新鲜细胞: 小心地将全部内容物转移到 15 mL 锥形管中,其中含有 10 mL PRIME-XV NK Cell CDM。

        • 取样计算细胞数。将细胞以 300 g 离心 5 分钟。
        • 小心吸去上清液,留下最小体积的培养基覆盖细胞沉淀。

           4. 可选:如果使用完整的 PBMCs,使用磁珠或者使用流式细胞仪富集 NKT 细胞。

        • 分选 CD3+CD56+ 细胞。
        • 可按需采用多种富集方法。
        • 取样计算细胞数。将细胞以 300 g 离心 5 分钟。
        • 小心吸去上清液,留下最小体积的培养基覆盖细胞沉淀。
        1. 使用流式细胞术检测细胞表型(是否存活、CD3、CD56、CD16)。如果富集 NKT 细胞,请对比富集前后的样本。

        NKT 细胞培养设置

        1. 补充 1000 IU/mL IL-2 至适当体积的 PRIME-XV NK Cell CDM 中。
        2. 将 NKT 细胞沉淀重悬于已补充的 PRIME-XV NK Cell CDM 中,浓度为 0.5x106NKT cell/mL。
        3. 以 2 mL 的体积将细胞和细胞因子混合物分装于 T-25 培养瓶内,在正常组织培养条件下垂直培养。
        • 37˚C 、5% CO2、加湿环境的培养箱。
        • 最多培养 14 天。
        1. 每隔 2~3 天补充 2x 的扩增培养基(步骤 6)使培养体积加倍。
        • 可以将细胞转移到更大工作体积的容器中,以适应两周内培养体积的增加。
        • 每次补充培养基时,评估活细胞密度、细胞活率和流式细胞术表型。
        • 不需要在两次补充培养基操作期间对细胞进行离心处理。

        来源:丁香实验

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