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        冰冻切片免疫组化染色

        相关实验:免疫组化

        最新修订时间:

        材料与仪器

        实验器材:冰冻切片机、载玻片、盖玻片、脱色摇床、涡旋混合器、移液枪、组化笔、冰箱、显微镜

        主要实验试剂:、OCT 包埋剂、无水乙醇、二甲苯、EDTA(PH9.0) 抗原修复液、PBS 缓冲液、4% 多聚甲醛、3% 双氧水、BSA、中性树胶、组化试剂盒 DAB 显色剂、一抗和二抗

        步骤

        相较于石蜡切片,冰冻切片具有制片快速、抗原活性好的优势,在免疫组化染色中无需进行脱蜡和抗原修复。主要流程包括:样本前处理、封闭、一抗孵育、二抗孵育、酶底物显色或荧光检测、封片观察等步骤。

        冰冻切片免疫组化染色

        图:冰冻切片免疫组化染色流程图

         

        以直接取材为例,展示冰冻切片组化染色实验流程:

        1、实验前处理

        冰冻切片取材可分为动物灌流固定和直接取材:

        动物灌流固定:

        a.通常采用预冷的 1xPBS 灌流冲洗至血液全部放出,随后灌注4%多聚甲醛直至小鼠僵直,而后解剖获取组织;

        b.置于 4℃,4% 多聚甲醛中固定 1 h 左右;

        c.1xPBS 清洗后,25% 蔗糖溶液脱水 12 h 左右包埋即可,可根据实际情况判断是否需要进行抗原修复。

        直接取材切片:

        组织切片晾干后,选择合适的固定剂固定,如 10% 中性福尔马林缓冲液、冷冻丙酮、甲醇、3% 甲醛等,通常不需要进行抗原修复。 

        2、封闭处理

        a.阻断内源性过氧化物酶:轻甩去载玻片上的液体,用吸水纸吸干组织切片周围残留的液体。使用疏水性免疫组化笔在组织切片周围的载玻片上画一个圆圈。根据组织大小滴加适量内源性过氧化物酶阻断剂,室温孵育 10~20 min,阻断完成后用 PBS 清洗载玻片,清洗 3 次,每次 3 min。

        b.(可选)滴加正常山羊血清封闭液,室温 20 min。甩去多余液体。

        3、一抗孵育

        根据组织大小,滴加 100 μl 或适量的一抗,4℃ 过夜孵育或室温孵育 1~2 h,孵育完成后,PBS 清洗 3 次,每次 3 min。

        4、二抗孵育

        滴加适量微聚物二抗,室温孵育 20 min,PBS 清洗 3 次,每次 3 min。

        5、DAB 显色

        DAB 工作液配制:在进行 DAB 显色前配制工作液,每 1 ml DAB Buffer 加入 100 μl DAB Solution (10×),混匀后,避光保存,建议在 30 min 内用完。 滴加适量新配制 DAB显色液,室温孵育 1~5 min,合理控制反应时间,防止染色过深,染色完成后使用 H2O 冲洗 10 min。

        6、复染与反蓝

        苏木素染色孵育,染色完成后,使用 H2O 冲洗 10 min。

        7、脱水、封片

        切片置于 70% 乙醇、80% 乙醇、90% 乙醇、95% 乙醇、无水乙醇和二甲苯各 3 min脱水。将已透明处理的切片取出,滴一滴中性树胶至组织切片中央,将盖玻片一端放置于切片上,缓慢将盖玻片放下并覆盖所有组织,避免气泡产生,置于通风橱内晾干。

        8、阅片

        来源:丁香实验

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