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        使用试剂盒测定一氧化氮含量

        相关实验:一氧化氮含量测定

        别名:Griess

        最新修订时间:

        丁香实验推荐阅读

        合作专家 | 张荣钊博士

        病原生物学 福建医科大学

        丁香实验推荐阅读

        审核专家 | 王蕾博士

        生物化学分子生物 浙江大学

        简介

        NO(Nitric Oxide,NO)广泛分布于生物体内,包括神经、循环、呼吸、消化、泌尿生殖等系统中,尤其是神经组织中较为丰富。它作为细胞间及细胞内的信息物质,发挥信号传递的作用,是一种新型的生物信使分子,在机体的生理、病理过程中起着重要的作用。

        原理

        NO 是一种极不稳定的生物自由基,在体内或水溶液中极易氧化生成 NO22- 和 NO33-,NO33- 可以通过镉被还原为 NO22-,NO22- 在酸性条件下与重氮盐磺酸胺生成重氮化合物生成重氮化合物,再与萘基乙烯基二胺进行偶联反应,生成有颜色的化合物,通过分光光度计在 550 nm 下测定吸光度值,并制作标准曲线,通过标准曲线可以计算 NO 含量。

        材料与仪器

        天平、分光光度计/酶标仪、低温离心机

        水浴锅/恒温培养箱、玻璃比色皿/96 孔板

        移液枪、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水、EP 管

        一氧化氮(NO)含量检测试剂盒(索莱宝 BC1475)


        溶液的配制:

        1、 试剂一:粉剂置于试剂瓶内玻璃瓶中。临用前加入 2.5 mL 蒸馏水混匀,-20 ℃ 分装保存两周,避免反复冻融;

        2、 显色液:临用前按照实验所需用量按 A 液 : B 液 = 1 : 1 充分混匀,现配现用;

        3、 标准品:10 μmol/mL 亚硝酸钠。

        步骤

        一、样本处理


        1、组织样本:按质量(g): 提取液体积(mL)1 : 5~10 比例(建议称取 0.2 g 样本,加入 1.0 mL 提取液)加入提取液,冰浴匀浆后,于 4 ℃,12000 rpm,离心 15 min,弃沉淀,取上清液于冰上待测。


        2、细胞样本:按细胞数量(104): 提取液体积(mL)500~1000 : 1 的比例(建议 1000 万细胞加入 1.0 mL 提取液)加入提取液,冰浴超声破碎细胞(功率 300 w,超声 3 s,间隔 7 s,总时间 3 min),然后于 4 ℃,12000 rpm,离心 15 min,弃沉淀,取上清液于冰上待测。


        3、液体样本:直接测定,若液体有浑浊则离心取上清测定。


        二、测定步骤


        1、分光光度计/酶标仪预热 30 min 以上,调节波长至 550 nm,蒸馏水调零。


        2、将试剂一置于冰上备用。


        3、标准液的稀释:将标准品用蒸馏水倍比稀释至 0.2、0.1、0.05、0.025、0.0125、0.00625、0.003125 μmol/mL。标准液稀释可参考下表:

        序号 稀释前浓度(µmol/mL) 标准液体积(µL)  蒸馏水体积(µL) 稀释后浓度(µmol/mL)
        1 10 100  900  1
        1 200 800 0.2
        3 0.2 500 500 0.1
        4 0.1 500 500 0.05
        5 0.05 500 500 0.025
        6 0.025 500 500 0.0125
        7 0.0125 500 500 0.00625
        8 0.00625 500 500 0.003125


        备注:实验中每个标准管需 100 µL 标准溶液。


        4、操作表:

         

        试剂名称(μL) 空白管 测定管 标准管
        蒸馏水 120 - 20
        标准液 - - 100
        样本 - 100 -
        试剂一 - 20 -

         

        漩涡混匀,置于 37 ℃ 恒温培养箱/水浴锅中水浴 60 min。

         

        试剂二 20 20 20

         

        漩涡混匀,室温静置 5 min,3500 rpm 离心 10 min,取上清液待测。

         

        上清液 100 100 100
        显色液 100 100 100

         

        漩涡混匀,室温静置 10 min,用玻璃比色皿/96 孔板在 550 nm 下测定吸光值 A,分别记为 A 空白、A 测定、A 标准,计算 ΔA 标准 = A 标准 - A 空白,ΔA 测定 = A 测定 - A 空白。标准曲线和空白管只需测 1~2 次。


        三、NO 含量计算


        1、标准曲线的绘制:


        以各个标准溶液的浓度为 X 轴(X,μmol/mL),其对应的 ΔA 标准为 Y 轴(Y,ΔA 标准),绘制标准曲线,得到标准方程 Y = kX + b,将 ΔA 测定带入方程得到 X(μmol/mL)。


        2、NO 含量的计算:


        (1)按样本蛋白浓度计算


        NO 含量(μmol/mg prot)= X × V ÷(V × Cpr)= X ÷ Cpr


        (2)按样本质量计算


        NO 含量(μmol/g 质量)= X × V ÷(W × V ÷ V 样总)= X ÷ W


        (3)按样本细胞数量计算


        NO 含量(μmol/104 cell)= X × V ÷(V × 细胞数量 ÷ V 样总)= X ÷ 细胞数量


        (4)按样本液体体积计算


        NO 含量(μmol/mL)= X × V ÷ V = X

         

        V :加入样本体积,0.1 mL;V 样总:加入提取液体积,1 mL;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;

         

        W:样本质量,g;细胞数量:以 104 为单位,万个。

        注意事项

        1、试剂盒 2~8 ℃ 保存。最低检出限:0.0004 μmol/mL,线性范围:0.00078~0.1 μmol/mL。检测值最好落在检出限的中间区段,增加数据的可靠性。

                                                                               
        2、尽量使用新鲜样品进行检测。实验之前建议选择 2~3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

        来源:丁香实验

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