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        🔥 PEI 转染法

        相关实验:细胞转染

        最新修订时间:

        丁香实验推荐阅读

        合作专家 | 张荣钊博士

        病原生物学 福建医科大学

        材料与仪器

        1. 材料

        质粒 DNA、指数生长的真核细胞

        PEI(聚乙烯亚胺)、1×HBS(pH = 7.4)

         

        2. 配方

        (1)PEI 储存液(100 μM):称取 125 mg PEI 粉末溶解于 50 ml 1×HBS(pH = 7.4)中, 0.2 μm 滤膜过滤,储存于 4 ℃ 备用。

        (2)1×HBS(pH = 7.4): 将 8.76 g NaCl 溶解于 900 ml 超纯水,加入 20 ml 1 M 的HEPES,调 pH 值到 7.4,定容至 1 L,过滤(0.2 μm 滤膜)后储存于 4 ℃ 备用。

        步骤

        1、细胞分盘:通过胰酶消化收集细胞,用适当的完全培养基以 4×105 至 8×105 细胞/cm2 的密度平铺细胞于 60 mm 组织培养皿上(根据实验需要选择培养皿,使细胞贴壁后所占总面积达到培养皿面积的 70~90%)。

        根据细胞贴壁情况于含 5% CO2 的 37 ℃ 温箱中孵育 8~24 h,当细胞贴壁完全后即可开始转染。转染前换入 2 mL 预热的无血清培养基。

        2、制备 PEI-DNA 混合物:以 60 mm 组织培养皿用 420 μL 反应总体积为例。

        准备两支 1.5 mL 离心管,一管将质粒 DNA(总量 2~8 μg 为佳)加入 240 μL HBS 中,混匀。另一管中则用 HBS 将 100 μM 的 PEI 储存液稀释成 10 μM,充分混合。

        然后取 180 μL 10 μM PEI 溶液加入含有 DNA 的 HBS 中,充分混匀后室温静置 20~30 min。最后将这 420 μL 的 PEI-DNA 混合液逐滴加入上述单层细胞的细胞培养基中,轻轻摇动平皿混匀,置于含 5%~7% CO2 的 37 ℃ 温箱孵育。

        注: 每次用 100 μM 的 PEI 储存液前都需要先将其充分混匀,保证所取的浓度一致。

        3、培养 6~10 h 后更换为 37 ℃ 预热的含有血清的培养基,继续培养,16 h 左右可以观测到报告基因的表达。

        来源:丁香实验

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