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        脉冲场凝胶电泳制备DNA(酵母完整DNA的分离)

        相关实验:脉冲场凝胶电泳制备 DNA(酵母完整 DNA 的分离)

        最新修订时间:

        原理

        制备用于电泳的酵母 DNA,先用酶破坏酵母细胞胞壁,然后在熔化的低熔点琼脂糖中混悬,制成栓。将栓浸入含蛋白酶的裂解缓冲液,以加速细胞裂解和除去蛋白质。此方法在 Schwartz 和 Cantor (1984) 最初介绍的方法上略有改进,它可用于制备作为 高分子质量标准的酵母染色体和酵母人工染色体(YAC)。

        材料与仪器

        步骤

        一、材料

        1. 缓冲液和溶液

        细胞清洗缓冲液(0.01 mol/L Tris-Cl ( pH 7.6),0.05 mol/L EDTA ( pH 8.0),室温存放。)

        EDTA ( 0.05 mol/L, pH 8.0)

        L 缓冲液(0.1 mol/L EDTA ( pH 8.0),0.01 mol/L Tris-Cl ( pH 7.6),0.02 mol/L NaCl,4℃ 存放)

        含蛋白酶 K 和十二烷基肌氨酸钠(Sarkosyl) 的 L 缓冲液

        TE(pH 7.6)

        含 40 μg/ml PMSF 的 TE(pH 7.6)

        酵母裂解缓冲液(0.01 mol/L Tris-Cl(pH 7.6),0.5 mol/L EDTA(pH 8.0),β-巯基乙醇(1% V/V))

        酵母细胞壁消化酶

        酶解酶(Zymolyase)5000(Kirin Breweries)或溶细胞酶(Lyticase)(67 mg/ml)(Sigma)

        2. 凝胶

        低熔点琼脂糖(1%)

        3. 离心机和转头

        Sorvall GSA 转头或相当型号的转头

        4. 专用设备

        预成型的 Plexiglas 模具(50~100 μl,Pharmacia 或 Bio-Rad), 或一个长的 Tygon 管(1/8 英寸或内径 3.2 mm), 或一个塑料注射器(1 ml)。

        5. 细胞和组织

        酵母混悬培养物

        二、方法

        1. 3000 g ( Sorvall GSA 转头 4300 r/min) 4℃ 离心 5 min 收集混悬培养的酵母细胞。用细胞清洗缓冲液洗两次细胞沉淀。

        2. 混悬细胞于 0℃ 的 0.05 mol/L EDTA(pH 8.0)中,浓度 3X109 个细胞/ml。

        3. 用 L 缓冲液配制 1% 低熔点琼脂糖。熔化后,冷却至 42℃。

        4. 加 75 μl 酶解酶或溶细胞酶溶液到步骤 2 的细胞混悬液内,混匀。

        5. 加热细胞混悬液至 42℃。将 5 ml 熔化的琼脂糖和 5 ml 细胞混悬液混合。用一个封口的巴斯德吸管搅匀混合物,以保证细胞完全分散在琼脂糖中。

        6. 混合物移入预成形的 Plexiglas 模具(50~100 μl,Pharmacia 或 Bio-Rad), 或吸混合物到合适长度的 Tyson 管(内径 3/32 英寸)内,也可以吸入 1 ml 塑料注射器内。室温放置 15 min,再移至 4℃ 放 15~30 min。

        7. 琼脂糖凝固后,从 Plexiglas 模具收集凝胶栓,或从 Tygon 管和注射器挤出凝胶。将圆柱形凝胶栓切成 1 cm 长的段。

        8. 3 倍体积酵母裂解缓冲液内 37℃ 温育凝胶块 3 h,化学通风橱内进行。

        9. 干净培养皿内加入 3 倍体积含有 0.1 mg/ml 蛋白酶 K 和 1% ( m/V)Sarkosyl 的 L 缓冲液。移入凝胶块,50℃ 温育 3 h。用新鲜等体积上述缓冲液替换旧的,继续 50℃ 温育 12~16 h。

        10. 在 50 倍体积含 40 μg/ml PMSF 的 TE ( pH 7.6) 50℃ 温育凝胶块 1 h。用新鲜等体积上述溶液替换旧的,继续 50℃ 温育 1 h。

        11. 除去含 PMSF 的 TE, 用新鲜等体积 TE ( pH 7.6) 室温继续温育 1 h。

        来源:丁香实验

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