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        引物设计和末端标记实验

        相关实验:引物设计和末端标记实验

        最新修订时间:

        材料与仪器

        步骤

        一、材料

        1. 缓冲液、溶液和试剂

        5X 激酶缓冲液

        0.25mol/LTris-HCl,pH9

        0.05mol/LMgCl2

        0.05mol/L 二硫苏糖醇(DTT)

        0.25 mg/ml 牛血清白蛋白(BSA)

        -20°C 储存

        灭菌重蒸水(ddH20)

        TE 缓冲液,pH8.0

        10 mmol/LTris-HCl,pH8.0

        1mmol/LEDTA,pH8.0

        2. 酶和酶缓冲液

        聚核苷酸激酶,10U/ul(Roche)

        3. 核酸和寡核苷酸

        寡核苷酸引物

        4. 放射性化合物

        [y-32P]ATP6000Ci/mmol/L(lCi=3.7X1010Bq)(PerkinElmerLifeSciences)

        也可用 [y-33P]ATP, 它相对于 [y-32P]ATP 危险性稍微小一些,并具有更长的半衰期,但是更贵。

        5. 离心机和转子

        用翻转吊桶式转子离心,15 ml 锥形管的适配器

        6. 专用设备

        丙烯酸防护板、离心管架(「betablock」)和废弃物容器

        离心管架(例如 3008-1000fromUSAScientific)

        收集管(1.5 ml,包括快速离心柱)

        冷却块(coolingblock)

        锥形管,15 ml

        盖革计数器(Geigercounter,—种放射能测定器)

        离心管,0.5 ml,灭过菌

        QuickSpin 柱(TE:),G-25 葡聚糖凝胶(Sephadex) 柱,用于放射性标记 DNA 的纯化(Roche)

        水浴

        二、方法

        1. 用灭菌 ddH20 将引物稀释至10umol/L。所购买的引物是以 50nmol/L 等级合成的收到时呈冻干粉状。用 PH8.0 的 TE 缓冲液将干粉溶解后,作为储存液保存。使用前将其稀释成 10umol/L 的工作溶液,分装成小份,冻存于-20°C。

        2. 选择一个引物进行末端标记。在冰上融化引物和 5X 激酶缓冲液。酶在加入反应体之前都要放在冰柜里,也可以用台式冷却块使酶维持在-20°C。在室温下融化同位素,需将丙烯酸防护板挡在前面。

        3. 在冰上将 3ul 灭菌 ddH20、5.6ul5X 激酶缓冲液、12ul 10mol/L 引物和 1.4ul 聚苷酸激酶加入到灭菌的 0.5 ml 离心管中,将冰盒放在丙烯酸防护板后面,加入 6ul[y-32P] ATP(6000Ci/mmol/L)。混匀,盖上盖子,37°C 水浴上温育 1~2 h。

        4. 在温育的最后 10min 准备 QuickSpin 柱。将柱子反复颠倒混匀,除去管帽和顶盖放入收集管内。将柱子/收集管组件置于 15 ml 锥形管中,在台式离心机中以 1100 g 离心2 min。倒干收集管再离心一次。在装入末端标记的反应混合物之前,转移柱到另一干净的收集管中。

        5. 温育完成之后,将末端标记反应混合物在离心机上短暂离心。加入 52ul 灭菌 ddH20,移液器吹打混匀,转移所有溶液到离心柱上纯化(比如除去未利用的核苷酸)。

        6.1100 g 离心 4 min。

        7. 从收集管上将柱子取下,并扔入适当的放射性废弃物容器中。盖上收集末端标记物的收集管的盖子。继续 PCR 方案(方案 2) 或将引物放在试管架上于-20°C 冻存。

        来源:丁香实验

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