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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
33
- 英文名:
Transhydrogenase-2 kit
- CAS号:
无
- 保质期:
1年
- 供应商:
上海晅科生物科技有限公司
- 保存条件:
2-8℃
- 规格:
50管/48样

线粒体转氢酶-2(TH-2)试剂盒
分光光度法 50 管/48 样
正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定测定意义
TH 位于线粒体的内膜上,又称为线粒体复合体六,催化 NADH+NADP+和 NAD++NADPH 相互转化,调节线粒体 NAD(H)和NADP(H)平衡。把逆向反应称为 TH-2,催化 NADPH 和NAD+生成 NADP+和 NADH。测定原理
NADH 和 NADPH 均在 340nm 有特征吸收,因此 TH 催化的转氢反应不能导致 340nm 吸光度发生变化。用人工合成底物 3-乙酰吡啶腺嘌呤二核苷酸(APAD+)替代 NAD+,TH-2 催化 APAD+还原生成 APADH,APADH 在 375nm 有特征光吸收,测定 375nm 光吸收的增加速率,来计算 TH-2 活性。需自备的仪器和用品
可见分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1mL 玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。试剂的组成和配制
试剂一:液体 50mL×1 瓶,-20℃保存; 试剂二:液体 25mL×1 瓶,-20℃保存; 试剂三:液体 25mL×2 瓶,4℃保存; 试剂四:粉剂×2 支,-20℃保存;试剂五:粉剂×2 支,-20℃保存;
样本的前处理:
组织、细菌或细胞中胞浆蛋白与线粒体蛋白的分离:① 准确称取 0.1g 组织或收集 500 万细菌或细胞,加入 1mL 试剂一,用冰浴匀浆器或研钵匀浆。
② 将匀浆 600g,4℃离心 5min。
③ 弃沉淀,将上清液移至另一离心管中,11100g,4℃离心 10min。
④ 上清液即为除去线粒体的胞浆蛋白,可用于测定从线粒体泄漏的 TH-2(此步可选做)。
⑤ 步骤④中的沉淀即为线粒体,加入 500uL 试剂二,超声波破碎(冰浴,功率 20%或 200W, 超声 3s,间隔 10 秒,重复 30 次),用于 TH-2 活性测定。
测定步骤:
1、 分光光度计预热 30min 以上,调节波长至 375nm,蒸馏水调零。2、 样本测定
- 工作液的配制:临用前取试剂三、试剂四和试剂五各一支,将试剂四、五转移到试剂三中混合溶解,置于 37℃(哺乳动物)或 25℃(其它物种)水浴 5min;用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。
- 在 1mL 玻璃比色皿中加入 100μL 样本和 1000μL 工作液,混匀,立即记录 375nm 处初始吸光值 A1 和 10min 后的吸光值 A2,计算 ΔA=A2-A1。

TH-2 活性计算
- 按样本蛋白浓度计算
TH-2 活性(nmol/min /mg prot)=[ΔA×V 反总÷(ε×d)×109]÷(V 样×Cpr)÷T=164×ΔA÷Cpr
- 按样本鲜重计算
TH-2 活性(nmol/min/g 鲜重)=[ΔA×V 反总÷(ε×d)×109]÷(W× V 样÷V 样总) ÷T=82×ΔA÷W
- 按细菌或细胞密度计算
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文献和实验度。 (2) 吸收系数法 按各品种项下的方法配制供试品溶液,在规定的波长处测定其吸收度,再以该品种在规定条件下的吸收系数计算含量。用本法测定时,应注意仪器的校正和检定。 (3) 计算分光光度法 采用计算分光光度法应慎重。本法有多种,使用时均应按各品种项下规定的方法进行。当吸收度处在吸收曲线的陡然上升或下降的部位测定时,影响精度的因素较多,故对照品和供试品测试条件应尽可能一致。若测定时不用对照品,如维生素A测定法,则应在测定时对仪器作仔细的校正和检定。
【 实验目的 】 学习紫外分光光度法测定核酸含量的原理和操作方法 【 实验原理 】 核酸、核苷酸及其衍生物都具有共轭双键系统,能吸收紫外光,RNA和DNA的紫外吸收峰在260nm波长处。一般在260nm波长下,每1ml含1µg RNA溶液的光吸收值为0.022~0.024,每1m1含1µg DNA溶液的光吸收值约为0.020,故测定未知浓度RNA或DNA
同时测定OD260nm,与OD280nm。,然后根据两种波长的吸收度的比值,通过经验公式校正,以消除核酸的影响而推算出蛋白质的真实含量。本法操作简便迅速,且不消耗样品(可以回收),多用于纯化之蛋白质的微量测定。主要缺点:当待测的蛋白质与标准蛋白质中的酪氨酸和色氨酸含量差异较大时,则产生—定误差,混有核酸时必须分别测定280nm和260nm两处的OD值,再按公式推算蛋白质含量。[操作]取试管7支,各管混匀,盛于石英杯中,用紫外分光光度计,以空白管调节零点,分别于280nm、260nm波长下测定各管光密
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