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- 2026年07月21日
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- 文献和实验
- 技术资料
- 库存：
20
- 细胞类型：
见详情说明
- 品系：
见详情说明
- 组织来源：
见详情说明
- 相关疾病：
见详情说明
- 物种来源：
大鼠
- 免疫类型：
见详情说明
- 细胞形态：
贴壁/悬浮
- 器官来源：
见详情说明
- 运输方式：
常温/干冰运输
- 年限：
见详情说明
- 生长状态：
优良
- 规格：
5×105cells/T25培养瓶
一、从液氮容器中取出原代细胞冻存管后，立即将细胞冻存管直接浸入37℃水浴中，在1－2分钟内摇动细胞冻存管至冻存的细胞融化。
二、用75％酒精消毒细胞冻存管后，小心打开盖子，用吸管吸出细胞悬浮液，接种到细胞培养瓶中，5%CO2、95%空气、37oC培养箱静置培养。
三、12小时后，更换一次原代细胞培养液（全部液体），继续在5%CO2、95%空气、37oC培养箱静置培养 。
注意事项
一、将冻存管从液氮容器中取出时，要做好防护工作，以免冻伤。
二、取冻存管后立即放入37oC水浴中，缩短解冻时间。
三、复苏最好用新配制的原代细胞培养体系。
原代细胞传代基本技术：
一、选用原代细胞生长状态好（90－95％），生长数量大于5×105进行传代。
二、吸除原代细胞培养液。用含双抗的1×PBS（pH7.4）清洗细胞培养瓶2次。
三、3ml细胞消化液加入细胞培养瓶，轻轻摇动，使细胞消化液覆细胞培养瓶底。
四、细胞培养瓶置于5%CO2、95%空气、37oC培养箱静置培养2分钟后，在显微镜下观察原代细胞的消化状态。（平滑肌细胞建议只消化30s）
请记住：如贴壁细胞逐渐趋于圆形、部分悬浮后，用手指轻轻拍打细胞培养侧部至大部分贴壁细胞悬浮，加入3ml血清终止液，终止细胞消化。每种原代细胞的消化时间是有差异的。
五、吹打培养瓶中悬浮细胞若干次，再吸出细胞悬浮液，转入15ml离心管中，1000rpm离心5分钟。
六、弃离心管中液体，加入原代细胞培养液重悬细胞。细胞计数，确定细胞数量。
七、细胞分瓶后，加入适量原代细胞培养液至细胞培养瓶中，置于5%CO2、95%空气、37oC培养箱静置培养24小时。
原代细胞冻存基本技术：
一、选用原代细胞生长状态好（90－95％），生长数量大于5×105进行冻存。
二、原代细胞冻存24小时，须换液新鲜原代细胞培养液一次。
三、贴壁的原代细胞需常规用0.25％胰酶消化，将消化后的细胞悬液收集至细胞离心管中。
四、细胞离心管在1000rpm下离心5分钟，小心弃清液。
五、将细胞冻存液加入细胞离心管中，悬浮细胞。细胞计数调整至5×105/ml。
六、将悬浮细胞放置细胞冻存管中。密封细胞冻存管。 标明细胞种类和冻存日期。
请记住：封口一定要严，否则复苏时易出现爆裂。
请按下列顺序降温保存原代细胞：室温→4℃（60 分钟）→ 冰箱冷冻室（60 分钟）→ 超低温冰箱（－80℃过夜）→ 液氮。
原代细胞冻存液常用配方：50%完全原代细胞培养液（不含有血清、添加剂、双抗）+ 40%胎牛血清 + 10%DMSO
原代细胞免疫荧光鉴定：
一、原代培养的细胞用 4%的多巨甲醛，室温固15 min，0.1% Triton-X-100 透膜 10 min，PBS 清洗 3 遍，每5 min，
二、山羊血清室温封闭45 min，一抗 Insulin，兔多抗，使用浓度 1 ∶ 50；Glucagon 抗体，鼠单抗，使用浓度 1 ∶ 200；
Pancreatic Polypeptide（pp）抗体，兔多抗，使用浓度1∶200，4 ℃孵育过夜，PBS 清洗 3 遍，每次 5 min，
三、加入相应的二抗 Alexa Flour 594 （山羊抗兔）或FITC（山羊抗小鼠），室温避光孵育 45 min，PBS
清洗 3 遍，每次 5 min，
四、DAPI 复染核，PBS 清洗 3遍，每次 5 min，普通荧光显微镜下观察并照相.
五、实验结果：
Insulin（200X）：图中红色荧光为Insulin阳性，阳性率＞90%，即：细胞纯度＞90%
原代细胞培养客户须知：
一、请客户收到本公司原代细胞产品后，立即对物品包装、细胞培养瓶等拍照，如有疑问或问题，须在24小时内通知本公司，提供照片和书面说明。
客户收到非冻存原代细胞后，请将原装的原代细胞瓶放入细胞培养箱内培养，4-12小时后再使用。75ml培养液含添加剂，血清及双抗，可吸出70ml左右直接使用，无需过滤。注意观察细胞情况，待贴壁率达到90%以上再按传代说明操作。
二、请客户使用T25细胞瓶传代，一瓶传二瓶。
三、谨记：培养原代细胞前三天，需对原代细胞生长状态进行拍照并注明和标记时间。若原代细胞培养生长存在质量问题，需向本公司提供原代细胞培养生长的照片和书面说明。
四、请客户使用原代细胞第3代以内。原代细胞培养传代过多，可能造成原代细胞的质量问题。
本产品仅用于科学研究使用等非医疗目的，不可用于人类或动物的临床诊断或治疗，非药用，非食用
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文献和实验实验材料：1. 动物胎体胃黏膜，胃溃疡或胃癌手术切除的正常胃黏膜组织2. 1%Ⅳ胶原蛋白或1%明胶铺培养瓶，4℃冰箱内过夜，使用前在37℃培养箱内放置2h，然后用培养液浸洗1次。3. 不含Ca2+ 和Mg2+ 的1×PBS，添加200000IU/L青霉素、200mg/L链霉素和200000U/L庆大霉素，pH7.44. 250000U/LⅠ型胶原酶或125000U/LⅠ型胶原酶和0.5%透明质酸酶，DMEM配置5. 解剖剪、解剖镊、眼科剪，眼科镊6. 离心管（15ml、50
胎鼠，放入70%乙醇中消毒1min。经腹正中切口取出小肠，放入预冷的PBS中。 2. 用PBS冲洗后，剪除肠系膜。纵行剪开肠壁，用PBS冲洗3次，洗去粘液。 3. 将肠壁剪成1mm3 左右的小块的组织块，放入20ml消化液中，37℃水浴中振荡消化30min。 4. 用吸管反复吹打组织块3-5min，然后以1000r/min，离心5min。吸去消化液后，加入PBS，反复吹打，悬浮沉淀的肠绒毛组织。在相差显微镜下观察可见单个黏膜上皮细胞或隐窝细胞团。 5. 将消化下来的细胞
2-3次，将黏膜剪成约1mm3 大小的组织块。 2. 将植块放入培养皿中，上皮面朝下；也可在培养皿内放入盖玻片，将组织块放在盖玻片上培养。 3. 当组织块贴壁后，加入适量培养液，培养液的量为能湿润组织块但不使组织块浮起为宜，在37℃、5%CO2 培养箱内静置培养。 4. 组织块贴壁1-3d后，补充培养液。以后每隔2-3d换液1次。 5. 植块培养3d后，细胞从植块边缘迁出。1周后，细胞向外迁移扩展，并逐渐分化，细胞的形态逐渐趋向正常食管黏膜上皮细胞
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