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8孔磁力架(5ml圆底离心管)(MAG-8-3)

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  • ¥1580
  • BORHEE
  • MAG-8-3
  • 深圳
  • 2026年04月24日
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    • 国食药监械注册号

      中国

    • 保修期

      3年

    • 现货状态

      有现货

    • 供应商

      博尔熙

    • 规格

    MAG-8-3磁力架是专为现代生物实验室设计的磁性分离设备,采用8联排管同步处理的创新设计,完美契合中小通量样本处理需求。为各类磁珠法分离实验提供高效、稳定的解决方案。

     

    1. 核心参数规格表

    参数类别 详细规格
    产品型号 MAG-8-3
    规格(mm): 120×65×55
    孔径: 13.5mm   适用于5ml圆底离心管
    处理通量 每次同时处理8个样本
    工作体积 200μl - 2ml
    典型磁分离时间 30秒 - 1分钟
    磁铁配置 8位高性能钕铁硼磁铁,对称排列
    磁珠吸附位置 管壁侧面,便于观察和操作
    主体材质 优质工程塑料,耐腐蚀易清洁

    2. 产品设计特点

    2.1 创新磁路设计

    • 对称磁极排列:采用N-S极对称排列设计,确保每个管位磁场分布均匀一致

    • 梯度磁场优化:磁场强度从中心向边缘递减,保证磁珠快速聚集吸附

    • 聚焦磁场技术:磁力线集中作用于管壁特定区域,提高分离效率

    2.2 人性化结构设计

    • 防滑底座:底部配备防滑硅胶垫,操作过程中保持稳定

    • 可视窗口:透明管槽设计,便于实时观察分离过程

    • 编码标识:每个管位清晰编号,避免样本混淆

    • 堆叠设计:支持多个磁力架垂直堆叠,节省实验室空间

    3. 性能优势

    3.1 高效率处理

    • 同步分离:8个样本同时处理,相比单管操作效率提升600%

    • 快速吸附:大多数磁珠在30秒内完成吸附,1分钟内完全分离

    • 批次一致性:确保同一批次8个样本处理条件完全一致

    3.2 卓越的分离效果

    • 吸附率:>99%的磁珠回收率

    • 清晰界面:液固相分离清晰,便于上清液完全移除

    • 低残留:磁珠残留量<1%,保证实验结果准确性

    4. 主要应用领域

    4.1 分子生物学应用

    • 中小通量核酸提取:质粒DNA小提、PCR产物纯化等

    • 文库构建:NGS建库过程中的磁珠纯化步骤

    • 片段筛选:特定大小DNA片段的磁珠筛选

    4.2 蛋白质研究

    • 免疫沉淀:抗体-抗原复合物的分离纯化

    • 蛋白纯化:His标签、GST标签蛋白的磁珠纯化

    • 磷酸化蛋白富集:磷酸化特异性抗体的免疫沉淀

    4.3 细胞生物学应用

    • 细胞分选:免疫磁珠法细胞分选

    • 外泌体提取:血清、细胞上清中外泌体的分离

    5. 操作指南

    5.1 标准操作流程

    1. 准备阶段:将磁珠-样本混合物轻柔混匀

    2. 放置样品:将8联排管准确放入磁力架管位

    3. 磁分离:静置30-60秒,观察磁珠完全吸附

    4. 去除上清:小心吸弃或倾倒上清液

    5. 洗涤操作:加入洗涤缓冲液,短暂涡旋混合后重复分离

    6. 洗脱收集:将排管移出磁力架,加入洗脱缓冲液重悬磁珠

    5.2 使用注意事项

    • 使用前确保磁力架放置于水平台面

    • 避免剧烈碰撞,防止磁铁退磁或损坏

    • 定期用75%乙醇清洁表面,保持卫生

    • 长期不使用建议存放于干燥环境中

    1. 外观图片

    MAG-8-3-1.jpgMAG-8-3-2.jpgMAG-8-3-3.jpg

          2 . 吸附图片

    MAG-8-3-4.jpgMAG-8-3-5.jpg

     

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    相关实验
    • 类器官培养与应用——肺类器官

      皿放置在 37℃ 条件下进行解离约 5-10min,直到所有的细胞都以小细胞块或单细胞的形式漂浮。 4、向每个中加入 5ml 的 DMEM-F12,以充分稀释 Dispase。 5、将所有细胞转移至离心管中,室温下 300g 离心 3min,收集沉淀细胞。加入 DMEM-F12 培养基,以 1:6 的比例接种在 Matrigel 包被的 24 培养板中,向每个中加入 0.5ml 预热的 mTeSR1 进行培养,至细胞汇合度达到 45-75%。   定向分化为内胚层和前肠球体 6、将 24 孔板

    • 类器官培养与应用——肠类器官

      的 6 孔板中,每孔加入 3ml mTeSR1,放置在 37℃,5%CO2 的培养箱中,培养至细胞融合度约为 75–85%、且大部分无分化的状态时,吸出培养基。 3、向 hPSCs 中加入 1 ml Dispase(1mg/ml),并将培养皿放置在 37℃ 条件下进行解离,直到所有的细胞都以小细胞块或单细胞的形式漂浮。向每个中加入 5ml的DMEM-F12,以充分稀释 Dispase。 4、将所有细胞转移至离心管中,室温下 300g 离心 3min,收集沉淀细胞。加入 DMEM-F12 培养

    • 蛋白质印迹(Western blot)实验方案

      冰上,用冰冷的 PBS 洗涤细胞。2. 吸出 PBS,然后加入冰冷的裂解缓冲液(每 107 细胞/100 mm 培养皿/150 cm2 培养瓶加入 1 ml;每 5×106 细胞/60 mm 培养皿/75 cm2 培养瓶加入 0.5 ml)。3. 用预冷的塑料细胞刮棒刮下贴壁细胞,然后轻轻地将细胞悬浮液转移至预冷的微量离心管中。4. 在 4 ℃ 下持续搅拌 30 分钟。5. 在 4 ℃ 预冷的离心机中以 16000 × g 的转速离心 20 分钟。6. 轻轻地从离心机中取出离心管,置于冰上。将上清

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