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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 规格:
1mL
Protein L Magnetic Beads
本产品4℃运输;保存于4℃,禁止产品冻结,长期存放请保证试剂管竖立向上,保质期24个月。
货号规格
goodYJ004 1 mL
产品简介
good本产品采用新一代纳米表面生物技术,将Protein L高密度共价偶联在超顺磁性纳米微球表面,是纯化大多数免疫球蛋白的理想工具。与传统的Protein L免疫沉淀琼脂糖凝胶相比,Protein L磁珠具有更大的特异性表面区域及更多的表面抗体结合位点,非特异性结合低,并且每次IP和Co-IP可以节省40%的时间,使用起来简便高效。
goodProtein L磁珠可应用于多种样品,细胞裂解液、细胞分泌液上清、血清、动物腹水以及其它的免疫抗原等均可适用。
产品参数
自备试剂
操作步骤
good◆gg1. 根据样品种类选择相应的处理方法:
good◆ 样1. 根A. 血清样品:若目标蛋白丰度较高,建议用 结合缓冲液 或1×PBS(货号:PS110)稀释血清样品至目标蛋白终浓度为10~100 µg/mL,置于冰上备用(或置于-20℃长期保存);
good◆ 样1. 根B. 悬浮细胞:离心收集细胞(4℃,500×g,10 min),弃上清后称重,按每毫克细胞50 µL的比例用1×PBS(货号:PS110)洗涤2次;按每毫克细胞5~10 µL的比例加入 结合缓冲液 ,同时加入蛋白酶抑制剂(货号:GRF101),混匀后置于冰上孵育10 min;离心收集上清液(4℃,14000×g,10 min),置于冰上备用(或置于-20℃长期保存);
good◆ 样1. 根C. 贴壁细胞:移去培养基,按每1.0×105个细胞150 µL的比例用1×PBS(货号:PS110)洗涤两次;用细胞刮刀刮落细胞,收集至1.5 mL离心管内,按每1.0×10个细胞20~30 µL的比例加入 结合缓冲液 ,同时加入蛋白酶抑制剂(货号:GRF101),混匀后置于冰上孵育10 min;离心收集上清液(4℃,14000×g,10 min),置于冰上备用(或置于-20℃长期保存);
good◆ 样1. 根D. 大肠杆菌:离心收集大肠杆菌(4℃,12000×g,2 min),弃上清后称重,按每克菌体(湿重)10 mL的比例用1×PBS(货号:PS110)洗涤2次;按每克菌体(湿重)5~10 mL的比例加入 结合缓冲液 ,同时加入蛋白酶抑制剂(货号:GRF101),重悬菌体,超声裂解细胞,离心收集上清(4℃,12000×g,10 min)。
good◆ 磁珠预处理
good◆gg2. 用移液器轻柔吹打 Protein L磁珠 ,使其充分混悬,取25~50 µL磁珠悬液置于1.5 mL 离心管中;
good◆gg3. 加入500 µL 结合缓冲液 或1×PBS,用移液器轻柔吹打重悬磁珠,接着在磁力架上静置1 min,待磁珠吸附到离心管侧壁上后,吸弃上清;
good◆gg4. 重复步骤3两次;
good◆ 抗体与磁珠结合
good◆gg5. 稀释:用 结合缓冲液 或1×PBS稀释抗体样品至终浓度为5~50 µg/mL,置于冰上备用;
good◆gg6. 结合:将500 µL上步稀释好的抗体加入预处理后的磁珠中,置于翻转混合仪上孵育(常温2 h,4℃ 4~6 h或过夜),接着在磁力架上静置1 min,待磁珠吸附到离心管侧壁上后,把上清液转移到新的离心管中备用(上清液可用于检测抗体是否存在残留),离心管中剩余的即为 抗体-磁珠复合物 ;
good◆gg7. 洗涤:在上一步得到的 抗体-磁珠复合物 中加入500 µL 结合缓冲液 或1×PBS,用移液器轻柔吹打重悬磁珠,接着在磁力架上静置1 min,待磁珠吸附到离心管侧壁上后,吸弃上清。再重复此步骤两次;
good◆ 抗原与抗体-磁珠复合物结合
good◆gg8. 结合:向洗涤后的 抗体-磁珠复合物 中加入500 µL步骤1制备好的样品,置于翻转混合仪上孵育(常温2 h,4℃ 4~6 h或过夜),接着在磁力架上静置1 min,待磁珠吸附到离心管侧壁上后,吸弃上清,离心管中剩余的即为 抗原-抗体-磁珠复合物 ;
good◆gg9. 洗涤:在上一步得到的 抗原-抗体-磁珠复合物 中加入1 mL 洗涤缓冲液 或1×PBS,用移液器轻柔吹打重悬磁珠,接着在磁力架上静置1 min,待磁珠吸附到离心管侧壁上后,吸弃上清。再重复此步骤三次;
good◆g10. 洗脱:本操作说明书提供以下两种抗原洗脱方案,操作者可根据后期检测的需要选择不同的抗原洗脱方法。
goodgoodgoodgo• 变性洗脱:此方法洗脱的样品适用于SDS-PAGE检测。向步骤9洗涤后的 抗原-抗体-磁珠复合物 中加入60 µL 1×SDS-PAGE上样缓冲液(货号:LT101)混合均匀,100℃加热10 min。待冷却后,将离心管在磁力架上静置1 min,待磁珠吸附到离心管侧壁上后,收集上清,进行SDS-PAGE检测。
goodgoodgoodgo• 非变性洗脱:此方法洗脱的样品保持原有的生物活性,可用于后期功能分析。向步骤9洗涤后的 抗原-抗体-磁珠复合物 中加入25~50 µL 洗脱缓冲液 ,室温孵育10 min;将离心管在磁力架上静置1 min,待磁珠吸附到离心管侧壁上后,收集上清液至新的离心管,并立即加入1 µL 中和缓冲液 将洗脱产物pH调节至中性,用于后期功能分析。
常见问题及对策
go◆ 如何避免磁珠在储存或使用过程中可能出现的聚集情况?
go◆ 答:磁珠应保存在2~8℃,使用时应避免由于污染或干燥而导致的聚集。磁珠在低pH值的洗脱缓冲液中发生聚集属于正常现象,不影响磁珠的正常使用。在 结合/洗涤缓冲液 和 洗脱缓冲液 中添加终浓度为0.1%(V/V)的非离子型去垢剂(如Triton X-100、Tween-20或NP-40)可有效防止磁珠聚集。经过低pH值洗脱操作的磁珠可以用结合缓冲液洗涤至中性,然后用含有0.1%(V/V)Tween-20的Tris buffer(pH 7.5)振荡重悬磁珠,并用超声波水浴处理2 min,即可使磁珠恢复均匀状态,以上处理均不影响磁珠的抗体结合效率。
go◆ 磁珠在使用过程中出现结块现象?
go◆ 答:磁珠在极少数情况下会出现结块现象,一般较难振荡打散,从而导致分布不均匀,这主要是因为磁珠在磁场中放置太久而牢固地结合在一起。用超声波水浴处理2 min即可打散磁珠,但要注意超声处理也会使磁珠在样品溶液中捕获的抗体脱落,因此磁珠在加样后洗脱前不宜使用该方法。
go◆ 如何提高抗体与磁珠结合效率?
go◆ 答:磁珠抗体间的结合效率与抗体的种属来源及所属亚型有关,请确认抗体的类型与Protein L配基的亲和效率。如抗体所属亚型与Protein L的亲和度较低,可以通过增加抗体与磁珠的孵育时间(30~120 min)、提高结合缓冲液的pH值(8~9)及降低离子强度(25~10 mM NaCl)等方法提高亲和效率。
go◆ 如何提高磁珠在免疫沉淀反应中的特异性?
go◆ 答:可以先将抗体与样品进行孵育,形成抗体-抗原复合物,再用Protein L磁珠捕获复合物。这种方法可以提高抗体与抗原的结合效率,并降低磁珠与样品接触的时间,从而提高沉淀产物的特异性。对于蛋白质/核酸共沉淀或染色质免疫共沉淀也推荐使用此法。
go◆ 如何解决磁珠易粘附管壁的现象?
go◆ 答:建议使用低吸附率的耗材进行磁珠操作。另外,在缓冲液中添加0.01%~0.1%(V/V)的非离子型去垢剂(如Triton X-100、Tween-20或NP-40)可以有效降低耗材对磁珠的粘附。
注意事项
good1. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作;
good2. 本产品仅限科研使用。
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