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上海达为科生物科技有限公司
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免疫组化实验
一、免疫组化技术原理与核心步骤
1. 技术原理
- 抗原-抗体反应:利用一抗特异性识别靶蛋白(如TLR4、NF-κBp65),二抗(酶标或荧光标记)放大信号,通过显色剂(如DAB)或荧光成像实现可视化。
- 定位与定量:可区分蛋白在细胞核、质或膜中的分布,结合图像分析软件(如IPP 6.0)进行半定量评分。
2. 标准化操作流程
根据文献整合,典型流程包括以下步骤:
- 样本制备:
- 结肠组织经10%中性甲醛固定24-48小时,梯度乙醇脱水,石蜡包埋后切片(厚度4-5 μm)。
- 需使用防脱载玻片(如多聚赖氨酸包被)防止组织脱落。
- 抗原修复:
- 微波法:枸橼酸盐缓冲液(pH 6.0)加热至沸腾,维持10-15分钟。
- 高压修复:适用于顽固抗原(如膜蛋白),121℃高压处理20分钟。
- 封闭与一抗孵育:
- 5% BSA或血清封闭非特异性结合位点15-30分钟。
- 一抗稀释度根据靶标优化(如TLR4 1:200,NF-κBp65 1:2000),4℃湿盒过夜。
- 信号放大与显色:
- 酶标二抗(HRP标记)37℃孵育20分钟,DAB显色控制至棕黄色颗粒出现。
- 苏木素复染细胞核,梯度乙醇脱水,中性树胶封片。

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文献和实验一、石蜡切片和冰冻切片的比较? 1、要求做冰冻切片的不一定能做石蜡切片,这是我向一老师请教得出的结论。因为作石蜡切片时要高温烤片,可能会破坏组织的抗原性,如果组织的抗原性较稳定,则可作石蜡切片;但是要求做石蜡切片的,可作冰冻切片。 2、冰冻切片的优点是能够较好的保存组织的抗原免疫活性,做免疫组化时不需抗原修复这一步。缺点是细胞内易形成冰晶而破坏细胞结构,可能会使抗原弥散;切片厚度较石蜡的厚,做的片子没石蜡的漂亮。当你买一抗时,目录上都写着做什么样的切片,如果它写着只能做冰冻,就不能做石蜡,如写
不完全,若存在,需延长脱蜡时间或换用新的二甲苯。 (5)抗原修复不完全:对于甲醛固定的组织必须用充分抗原修复来打开抗原表位,以利于与抗体结合。 (6)细胞通透不全,抗体未能充分进入胞内参与反应:可加入组织透化步骤,进行细胞膜或核膜的透化。 (7)试剂盒保存不当:请于 4℃ 进行保存,勿室温防止过长时间。 (8)封闭时间过长:若使用封闭液进行封闭,请排除封闭液对抗原抗体结合的影响。 Q2:免疫组化染色弱怎么办? (1)抗体浓度过低,孵育时间过短:可提高抗体浓度,进行抗体4℃过夜孵育。 (2)组织
管树军621 各位大侠,我在论坛上看到大家检测NF/KB与IKBa用的都是WB的方法,我想用免疫组化的方法,好出结果吗,两者相比那种方法更容易出结果呢?我只想只一个好出结果的方法并且试剂相对便宜一些。谢谢!请高手指点。我的邮箱是guanshujun621@163.com 00501101 如果你是硕士的话,可以骗过国内的人,蒙混过毕业就行了 如果你是博士的话,要发SCI,请不要用组化代替wb,老外没有人这样代替










