
XbaI(星选酶)
- ¥2300
- NEB
- R0145L
- 2025年07月13日
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- 文献和实验
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- 规格:
15,000 units
在不同反应缓冲液的活性
NEBuffer 1.1: <10%
NEBuffer 2.1: 100%
NEBuffer 3.1: 75%
CutSmart Buffer: 100%
特性
CutSmart、重组酶、省时酶。
反应条件
CutSmart 缓冲液,37℃。
热失活:65℃ 20 分钟。
浓度
20,000 和 100,000 units/ml。
甲基化敏感性
对 dam 甲基化敏感。
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文献和实验酶切效率。这样就可以开始设计引物:用鼠标拖选 Znf516 前 28-25 bp(可以通过页面最下面一排的标题栏选择 Sequence,这样可以看到一个个的核苷酸序列,方便拖选,而且在拖选的时候会显示多少 bp 的序列被选中,GC 比以及 Tm 值,很方便), 一般 Tm 值为 50-60C 都是可以接受的。点击 Add primer(如图 6)。这样就跳出提示框,是需要选中序列的 Top strand(正向序列) 还是 bottom strand(反向互补序列),对于正向 / 上游引物,选择正向
我想把目的基因连接到载体上,有几个问题想请教斑竹和各位战友:1、限制性内切酶的选择:我查看论坛说选择酶切位点需要考虑酶切位点在载体上的距离、酶切温度与连接效率、价格、使用频率等等。最后我综合价格、温度、Buffer选定XbaI和EcoRI,打算购买宝生的酶,相应的Buffer用附带的10×M Buffer。不知道我选择的酶切位点合适不合适呢?2、引物设计:引物结构为:保护碱基+酶切位点+目的基因末端上游引物5’-CCG TCTAGA ATGGCTTCGTACCCCTGC-3'下游引物5’-
的关键: · 载体DNA的质量 · PCR产物的完全酶切 1. 保证完全酶切: · 记住,当你设计一个酶切时,你的限制性内切酶的用量是与DNA分子的大小,以及DNA量是密切相关的。 而且根据每种酶的单位定义,所需的限制性内切酶的量是可以精确计算的。 因而请不要简单的套用酶说明书中的“通用酶切方案“,那个通用酶切方案是很多克隆失败 的原因。 - 在实际工作中,完全酶切同一种DNA分子,不同的酶所需的酶量可能
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