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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
大量
- 英文名:
血液基因组DNA提取试剂盒
- 保质期:
保存2年
- 供应商:
上海康朗生物科技有限公司
- 保存条件:
-20℃
- 规格:
50次/100次
规格价格:50次/572.00元
规格价格:100次/1021.00元
产品组分
| 货号 |
KL1121 (50次) |
KL1122 (100次) |
| 红细胞裂解液RS |
80 ml |
80 ml×2 |
| 消化缓冲液DS |
15 ml |
30 ml |
| 裂解液MS |
20 ml |
40 ml |
| 蛋白酶K |
1 ml |
2 ml |
| 去蛋白液PS |
30 ml |
60 ml |
| 漂洗液PE |
15 ml |
30 ml |
| 纯化液TE |
5 ml |
10 ml |
| DNA纯化柱 |
50个 |
100个 |
| 说明书 |
1份 |
1份 |
● 裂解液MS中含变性剂,请不要直接接触皮肤。
● 漂洗液PE初次使用前用无水乙醇按1: 3稀释,即含75%乙醇。
产品说明
本产品可用于全血样本的基因组DNA的纯化。纯化原理是利用红细胞裂解液先去除血液中的红细胞*,裂解细胞核释放基因组DNA,由硅胶膜柱可逆吸附体系内
的基因组DNA,经蛋白酶消化、漂洗液清洗除去蛋白质、脂质等杂质后,用纯化液洗脱获得基因组DNA。
本产品适用于未凝固全血,以及经各种抗凝剂(EDTA、肝素、柠檬酸)处理过的全血样本。一次可从0.4 ml全血中提取到3-10 μg高纯度基因组DNA(OD260/OD280 =1.7-1.9),此基因组DNA可直接用于PCR、酶切等后续实验。
*本产品不能从全血中直接提取DNA,要去除血液中红细胞后才能得到高浓度的基因组DNA。如要直接从全血迅速提取高纯度基因组DNA,建议选择Quick血液基因组DNA提取试剂盒(东盛货号:N1131、N1132)。
质量控制
纯化的基因组DNA质量通过限制性酶切和单拷贝基因的PCR扩增鉴定。
保存条件
蛋白酶K(20 mg/ml)室温运输,于-20℃保存,避免反复冻融。
其余试剂置于室温(15-25℃)干燥条件下保存1年。
如果消化缓冲液DS和裂解液MS中有沉淀,可在55℃加热溶解,待恢复室温后混匀即可使用。不会影响基因组DNA的纯化效率。
注意事项-----------------------------------------------------------------------------------------------------------
● 漂洗液PE第一次使用前请按瓶上标签加入3倍体积的无水乙醇,即15 ml漂洗液PE加入45 ml无水乙醇,30 ml漂洗液PE加入90 ml无水乙醇,使用后立即盖紧盖子。
● 消化缓冲液DS和裂解液MS室温保存可能会有沉淀产生,在55℃加热溶解,待恢复至室温后混匀即可使用。不会影响基因组DNA纯化效率。
● 柠檬酸、EDTA和肝素三种抗凝剂均可使用。但肝素对酶促反应有可能起抑制作用。采血时如没有特殊要求,请使用柠檬酸或EDTA处理血样。
● 基因组DNA的得率,会因抗凝剂的种类以及血液保存条件的不同而各异。
● 基因组DNA需长期保存时,建议使用纯化液TE。用无菌的离心管分装后保存于-20℃或-80℃。
● 所有离心步骤均为室温下进行。
● 请严格按照操作步骤操作。
操作步骤----------------------------------------------------------------------------------------------------------
1 取血液样本,每400 μl血液加入到一只1.5 ml离心管中。加入2倍体积的红细胞裂解液RS。涡旋振荡混匀,室温放置15 min。5,000 rpm离心3 min,弃上清,收集白色或淡红色沉淀,注意不能把沉淀倒掉。
● 如沉淀仍然呈深红色,表明红细胞裂解不充分,可再加500 μl红细胞裂解液RS处理一次。
● 对于哺乳动物全血,每400 μl全血中可提取3-10 μg的基因组DNA。如从鸟类、两栖类或更低级的动物血液中提取基因组DNA,因其血液中红细胞有细胞核,血液用量勿超过20 μl/离心管。每20 μl全血中可提取40 μg的基因组DNA。
2 加入200 μl消化缓冲液DS,涡旋振荡至形成完全均一的悬浮液。
● 如需去除RNA,可加入4 μl RNase A(100 mg/ml,N9042),振荡15秒,室温放置5 min。
3 加入20 μl蛋白酶K和220 μl裂解液MS,涡旋振荡混匀,65℃温浴15 min,溶液应变清亮,简短离心以去除管盖内壁的水珠,室温放置5 min使溶液冷却。
● 加入裂解液MS时可能会产生白色沉淀,一般65℃放置时会消失,不会影响后续实验。如溶液未变清亮,说明细胞裂解不彻底,可能导致提取DNA量少和提取出的DNA不纯。
4 加入220 μl无水乙醇,上下颠倒混匀,此时可能出现絮状沉淀,简短离心以去除管盖内壁的水珠,将溶液及絮状沉淀转移到纯化柱中。12,000 rpm离心1 min,弃滤液。
● 此时基因组DNA被吸附于DNA纯化柱中的硅胶膜上。
5 加入500 μl去蛋白液PS,12,000 rpm离心1 min,弃滤液。
● 此步骤的作用是去除硅胶膜上吸附的蛋白、脂质等杂质,以获得高质量的基因组DNA。
6 加入500μl漂洗液PE,12,000 rpm离心1 min,弃滤液。
● 漂洗液PE初次使用前用无水乙醇按1: 3稀释,即含75%乙醇。
7 加入500 μl漂洗液PE,12,000 rpm离心1 min,弃滤液。
8 12,000 rpm离心3 min,以彻底去除纯化柱中残留的液体。
● 此步骤的作用是去除残留乙醇,避免影响后续的酶促反应(PCR或酶切)。同时利于基因组DNA充分溶解。
9 将纯化柱置于新的1.5 ml离心管中。向纯化柱中央处,悬空滴加30-100 μl洗脱液TE。室温放置2 min。
10 12,000 rpm离心2 min,管底即为高纯度基因组DNA。-20℃保存。
● 洗脱液TE可用去离子水代替,但其pH需为8.0-8.5。体积视DNA含量多少、用户对DNA浓度要求而定。
● 对洗脱液TE 65℃预热,会提高基因组DNA的产量。
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