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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
大量
- 英文名:
500bp ladder
- 保质期:
保存2年
- 供应商:
上海康朗生物科技有限公司
- 保存条件:
-20℃
- 规格:
60次/60次×3
500bp ladder

规格价格:60次/234.00元
规格价格:60次×4/572.00元
建议上样量
3-5 µl/次。可根据上样孔大小选择合适上样量。
500bp ladder已预混上样缓冲液,可直接进行电泳分析。
建议电泳条件
8 cm 1 %琼脂糖凝胶,
1×TAE,7 V/cm,40 min。
保存
常温保存3个月,长期保存请置于-20℃。
各条带含量
指示带 100 ng/5µl
非指示带 40 ng/5µl
产品说明
500bp ladder由10条双链线状DNA片段混合而成,适用于确定500 bp至5 kb的线性双链DNA片段大小,指示带为2000 bp,便于电泳后观察。每条带都通过严格的物理定量,可用于测定目的片段的大小和含量。
产品浓度为92 ng/µl。
条带组成(bp)
500、1,000、1,500、2,000、2,500、3,000、3,500、4,000、4,500、5,000
注意事项
● 请选择高品质的琼脂糖,并及时更换电泳缓冲液。溶胶不充分会导致因胶浓度不均而出现电泳条带异常;陈旧的缓冲液离子缓冲能力不足,可能导致Marker条带泳动缓慢,并伴随弥散现象。
● 胶浓度、电压、电泳时间是影响DNA片段分离的主要因素,为获得最佳电泳分离效果,建议按照康朗推荐的条件进行电泳分析。
● 上样量的多少取决于样品的浓度与加样孔的大小。由于康朗Marker的浓度较高,通常对于宽3mm(厚0.75-1mm)的加样孔,建议上样2-3 μl,对于宽5mm(厚0.75-1.5mm)的加样孔,建议上样4-6 μl。过多的上样量可能导致条带相互挤压,分散不充分,跑不开,影响条带分离效果。
● 使用本产品进行定量分析时,可将目的片段做梯度上样,选择亮度与Marker条带最为接近的片段进行分析。
● 进行PAGE胶电泳分析时,建议取0.5-1 μl Marker并用1×loading buffer稀释到适当体积上样。
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文献和实验【求助】492bp片段跑胶比500的marker要大(如图)!为何?
stb1986 PCR产物492bp(经过测序验证),可是多次琼脂糖电泳条带却明显比500的marker要大(如图),不知原因是什么呢?GC比例为30%,可是G+C与A+C的分子量差别不大啊,请问有战友试过类似情况不?原因何在?谢谢! liupeiyanxiaohai 我也遇到过, 认为是maker不准,可以换个marker试试 qst1981 我也遇到过一样的问题 我想
呀,当然如果时间够长的话! wscoco78 :嗯,上次我是选择性抽提的小片段,用的0.8%,是好像条带清晰一些,不过1.5%我也跑出来过,我当时还用到了100bp的marker,所以才用了1.5%,chujun可以综合考虑,那就0.8%~1.5%吧。midas: 自己的实际经验比任何教课书都管用。 brainchip :你们在做LADDER,收集贴壁细胞时,用的是什么方法收集的细胞,胰酶消化么?有没有更好的方法,因为有人说胰酶对已发生调亡的细胞的细胞壁有损害,可以减少凋亡的细胞 数量,是不是真有此事
(2 μl) RNA ladder with 5 μg anchored Oligo(dT)20 primer at 70°C for 5 minutes. Keep on ice. 2) Combine the RNA-oligo dT complex from Step 1 with 1X 1st strand cDNA synthesis buffer supplemented with 10 mM DTT, 500 μM dNTP, 2 U RNaseOUT™
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