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大型质粒大量提取试剂盒(150~200mL)

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  • ¥380 - 3800
  • 百奥莱博
  • ALH091-DMK
  • 北京
  • 2025年07月11日
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      266

    • 英文名

      Large Plasmid Extraction Kit(for cell transfection)

    • 保质期

      18个月

    • 供应商

      北京百奥莱博科技有限公司

    • 保存条件

      RT

    • 规格

      20次

    本试剂盒用碱裂解法从培养菌中提取质粒DNA,采用独特的溶液配方和内毒素清除试剂,只需要几次简单离心去除蛋白质、多糖、内毒素、RNA等杂质,获得高质量的质粒DNA。纯化DNA的OD260/OD280通常在1.8左右,得到的质粒可直接应用于细胞转染甚至动物体内实验等对DNA纯度要求很高的工作中。纯化后期过程均在Eppendorf管中操作,方法简单,不需特殊设备,无需过柱,不用酚氯仿抽提;基本可完全回收细菌裂解释放出的质粒,不必担心质粒DNA的丢失。本方法提取纯化质粒DNA,对质粒损伤小,即使是10kb甚至100kb以上的大型质粒或超大型BAC/PAC质粒,只要碱裂解法能够提取,就可以有效纯化。可选择任意小体积溶解质粒,浓度可高达3μg/μl。

    试剂盒特点:
    • 不需要使用有毒的苯酚,氯仿等试剂,也不需要乙醇沉淀。快速、方便、从150~200mL大肠杆菌LB((Luria-Bertani)培养液中,可快速提取0.4~1mg纯净的高拷贝质粒DNA,提取率达80~90%。

    • 获得的质粒产量高,超螺旋比例高,纯度好,可直接用于酶切、转化、PCR、体外转录、测序等各种分子生物学实验。

    • 内毒素含量极低(<0.1 EU/μg DNA),可直接应用于细胞转染。


    试剂盒组成:
    组分 规格 保存
    RNaseA(10mg/ml) 1.3mL -20℃
    溶液P1 130mL 4℃
    溶液P2 100mL 室温
    溶液PⅢ 110mL 室温
    杂质清除剂A 3mL 室温
    杂质清除剂B 30mL 室温
    内毒素清除剂 10mL -20℃

    保存:室温储存18个月不影响使用效果。

    保存事项:
    • 第一次使用时,将试剂盒所带全部的RNase A加入溶液P1后(终浓度100μg/ml)置于4℃保存。如果溶液P1中RNase A失活,提取的质粒可能会混杂有微量RNA残留,在溶液P1中补加RNase A即可。

    • 内毒素清除剂在4℃可保存一个月,如果要长期保存,建议保存在-20℃!

    • 环境温度低时溶液P2中SDS可能会析出出现浑浊或者沉淀,可在37℃水浴加热几分钟,即可恢复澄清,不要剧烈摇晃,以免形成过量的泡沫。

    • 避免试剂长时间暴露于空气中产生挥发、氧化、pH值变化,各溶液使用后应及时盖紧盖子。


    注意事项:
    • 提取的质粒量与细菌培养浓度、质粒拷贝数等因素有关。如果所提质粒为低拷贝质粒或大于10kb的大质粒,应加大菌体使用量,同时按比例增加P1、P2、PⅢ的用量。

    • 提取大质粒时操作动作要轻柔,应该使用剪大了开口的吸头,防止机械剪切对DNA的损坏。

    • DNA沉淀液沉淀离心后,可能看不到明显沉淀。如未见沉淀,担心DNA丢失,可保留上清液,待完成全部操作后电泳鉴定,以确定是否获得终产物(数百微克DNA离心沉淀在管的侧壁上,可能无法看到明显团块)。

    • 得到的质粒DNA可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。OD260值为1相当于大约50μg/ml DNA。电泳可能为单一条带,也可能为2条或者多条DNA条带,这主要是不同程度的超螺旋构象质粒泳动位置不一造成,与提取物培养时间长短、提取时操作剧烈程度等有关。本公司产品正常操作情况下基本超螺旋可以超过95%。

    • 质粒DNA确切分子大小,必须酶切线性化后,对比DNA分子量Marker才可以知道。处于环状或者超螺旋状态的质粒,泳动位置不确定,无法通过电泳知道确切大小。


    操作步骤:(实验前请先阅读注意事项)
    提示:将RNase A全部加入溶液P1中,混匀,使用后置于2~8℃保存。
    • 取过夜培养菌150mL左右菌液(最大不超过180mL~200mL),装入合适的离心瓶中,10000×g于4℃离心2min沉淀菌体,完全弃除上清。

    • 加入5mL溶液P1,充分混悬震荡菌体沉淀,使其完全分散开,至无絮块存在。细菌悬液移入50mL离心管中,室温放置3~5min。
      如果有未彻底混匀的菌块,会影响裂解,导致提取量和纯度偏低。

    • 加入5mL溶液P2,轻轻颠倒离心管6~8次,室温放置4~5min,使细菌完全裂解,溶液透明。
      温和地混合,不要剧烈震荡,以免基因组DNA剪切断裂!所用时不应超过5分钟!以免质粒受到破坏。此时菌液应变得清亮粘稠,如果菌体少,很快清亮粘稠后就可以做下一步,不是一定要准确的5分钟。如果未变得清亮,可能由于菌体过多,裂解不彻底,应减少菌体量。

    • 加5mL溶液PⅢ,立即颠倒离心管6~8次,充分混匀,至白色絮状物产生。上述裂解液于4℃ 12000~16000×g离心10~15min,小心吸出上清,移入新的50mL离心管中。
      加入溶液PⅢ后应该立即混匀,以免产生SDS的局部沉淀。

    • 加入10mL异丙醇,颠倒离心管,充分混匀。
      注意:使用异丙醇沉淀,蛋白杂质和盐离子共沉淀较少,可能看不到明显的较大团块沉淀,但是质粒还是可以完全沉淀下来,不影响实际的质粒产量。如果你习惯看见较大的沉淀团块操作,可以选择2倍体积的无水乙醇沉淀。

    • 于4℃ 12000~16000×g离心10min,小心弃去上清,倒置于吸水纸上轻轻沥干残余液体,加入3~5mL 70%乙醇漂洗一遍,最高速离心5分钟,弃上清,晾干沉淀。
      DNA沉淀如果干燥过头,DNA将无法完全溶解,但是如果乙醇没有晾干挥发干净,残留太多,也会造成DNA无法完全溶解。
      注意:异丙醇离心沉淀后,质粒纯度很高吸附在管底和侧壁可能看不见沉淀,但是不影响产量,后续步骤仔细吹打管底和沉淀所在的侧壁涮洗溶解质粒。

    • 加入1.4mL溶液P1完全溶解沉淀团块,注意附着在管底和侧壁上的质粒沉淀虽然可能看不见,也要吹打管底和沉淀所在的侧壁涮洗下来(大质粒可用宽口吸管轻轻吹打辅助溶解)。然后将质粒溶液转入2个新的1.5mL离心管中(每个700μL)。
      可选步骤(一般不需要):如果菌株RNA丰富有微量RNA残留,可在此步骤后将质粒溶液60℃孵育15min消化RNA。

    • 每管加入55μL杂质清除液A,颠倒充分混匀后加入约0.1体积(约80μL)冰预冷的内毒素清除剂,颠倒旋转7~10次(30秒左右)充分混匀,冰浴或者冰上放置≥5分钟,中间偶尔颠倒混匀几次。
      内毒素清除剂加入上清后,上清会变得浑浊,但是冰浴后应恢复清亮。
      注意:如果不需要去内毒素用于转染,可在此步骤只加入55μL杂质清除液A,充分混匀后冰上放置5分钟,离心后小心取上清转入一个新管,直接接步骤11。

    • 42℃水浴,溶液又会变为浑浊,颠倒混匀后42℃温育5分钟。

    • 室温14000×g离心5min分相(温度低时,内毒素清除剂无法分相,因此必须至少20℃以上室温离心或者保证冬季转头温度20℃以上)。上层水相含DNA,下层蓝色油状相含内毒素和其它杂质。将含DNA的上层水相转移到新管(注意不要吸到蓝色油状层,里面含内毒素等杂质),弃油状层。
      溶液必须分为上下两相,否则应重复步骤9-10。

    • 将上一步所得上层水相中加入等体积杂质清除液B(约750μL),轻柔混匀,4℃ 14000×g离心10min,弃上清(注意不要丢失DNA),轻轻加入1mL 70%乙醇洗涤,离心弃上清,共两次,室温倒置晾干5~10min使乙醇完全挥发。

    • 每个离心管加适量TE或者纯水(100~200μL)溶解沉淀(可在37℃水浴中振荡以辅助溶解)。要注意很多质粒DNA可能附着在离心管侧壁上,即使看不见,也应该充分吹打侧壁溶解回收质粒DNA。
      最后沉淀可以根据需要选择任意小体积溶解,这样可以得到很高浓度的转染级质粒DNA(高达5~10μg/μl)。如果有需要,客户也可以选择更大体积溶解。
     

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