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质粒大量提取试剂盒(150~300mL )

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  • ¥380 - 3800
  • 百奥莱博
  • ALH088-VIF
  • 北京
  • 2025年07月07日
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      375

    • 英文名

      A large number of Plasmid Extraction Kit (centrifugal column type)

    • 保质期

      12个月

    • 供应商

      北京百奥莱博科技有限公司

    • 保存条件

      RT

    • 规格

      10次

    本试剂盒采用改进SDS-碱裂解法裂解细胞,离心吸附柱内的硅基质膜在高盐、低pH值状态下选择性地结合溶液中的质粒DNA,再通过去蛋白液和漂洗液将杂质和其它细菌成分去除,最后低盐、高pH值的洗脱缓冲液将纯净质粒DNA从硅基质膜上洗脱。

    试剂盒特点:
    • 离心吸附柱内硅基质膜全部采用进口世界著名公司特制吸附膜,柱与柱之间吸附量差异极小,可重复性好。克服了国产试剂盒膜质量不稳定的弊端。

    • 不需要使用有毒的苯酚、氯仿等试剂,也不需要乙醇沉淀。快速、方便,从150~300mL大肠杆菌LB((Luria-Bertani)培养液中,可快速提取0.5~2mg纯净的高拷贝质粒DNA,提取率达80%以上。

    • 获得的质粒产量高、超螺旋比例高、纯度好,可以直接用于酶切、转化、PCR、体外转录、测序等各种分子生物学实验。


    试剂盒组成:
    组分 规格 保存
    RNaseA(10mg/ml) 750μL -20℃
    溶液P1 77mL 4℃
    溶液P2 77mL 室温
    溶液N3 77mL 室温
    漂洗液WB 2×25mL 室温
    洗脱缓冲液EB 20mL 室温
    吸附柱DC及收集管(50mL) 10套 室温

    保存:室温储存12个月不影响使用效果。

    保存事项:
    • 第一次使用时,将试剂盒所带全部的RNase A加入溶液P1后(终浓度100μg/ml)置于4℃保存。如果溶液P1中RNase A失活,提取的质粒可能会有微量RNA残留,在溶液P1中补加RNase A即可。

    • 环境温度低时溶液P2中SDS可能会析出出现浑浊或者沉淀,可在37℃水浴加热几分钟,即可恢复澄清,不要剧烈摇晃,以免形成过量的泡沫。

    • 避免试剂长时间暴露于空气中产生挥发、氧化、pH值变化,各溶液使用后应及时盖紧盖子。


    注意事项:
    • 本试剂盒适用菌株为XL-1 Blue、Top10和DH5α等核酸酶含量低缺陷型菌株。所用菌株为JM系列、HB101等endA菌株或野生型菌株,核酸酶含量丰富,应购买本公司生产的高纯度质粒大量快速提取试剂盒(ALH089)。

    • 所有的离心步骤如未加另外说明均在室温完成,使用转速可以达到12000×g,带50mL转头的台式离心机。

    • 提取质粒的量与细菌培养浓度、质粒拷贝数等因素有关。如果所提质粒为低拷贝质粒或大于10kb的大质粒,应加大菌体使用量,同时按比例增加P1、P2、N3的用量,洗脱缓冲液应在70℃预热。可以适当的延长吸附和洗脱的时间,提高提取效率。

    • 得到的质粒DNA可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。OD260值为1相当于大约50μg/ml DNA。电泳可能为单一条带,也可能为2条或者多条DNA条带,这主要是不同程度的超螺旋构象质粒泳动位置不一造成,与提取物培养时间长短、提取时操作剧烈程度等有关。本公司产品正常操作情况下基本超螺旋可以超过90%。

    • 质粒DNA确切分子大小,必须酶切线性化后,对比DNA分子量Marker才可以知道。
      处于环状或者超螺旋状态的质粒,泳动位置不确定,无法通过电泳知道其确切大小。

    • 洗脱液EB不含有螯合剂EDTA,不影响下游酶切、连接等反应。也可以使用水洗脱,但应该确保pH大于7.5,pH过低影响洗脱效率。用水洗脱,质粒应该保存-20℃。质粒DNA如果需要长期保存,可以用TE缓冲液洗脱(10mM Tris-HCl,1mM EDTA,pH8.0),但是EDTA可能影响下游酶切反应,使用时可以适当稀释。


    操作步骤:(实验前请先阅读注意事项)
    提示:
    ① 第一次使用前请先在漂洗液WB瓶中加入指定量无水乙醇,充分混匀,加入后请及时在方框打钩标记已加入乙醇,以免多次加入!
    ② 将RNase A全部加入溶液P1中,混匀。每次使用后置于2~8℃保存。
    • 取150~200mL (最多不超过300mL)过夜培养的菌液,12000×g(约10000rpm),离心1~2分钟,尽可能的倒干上清,收集菌体。
      收集超过50毫升菌液,可以离心弃上清后,在同一个50mL管内加入更多的菌液,重复步骤1,直到收集到足够的菌体。

    • 用7.5mL溶液P1重悬菌体沉淀,移液器吹打或者涡旋振荡至彻底悬浮。
      如果有未彻底混匀的菌块,会影响裂解,导致提取量和纯度偏低。

    • 加7.5mL的溶液P2,温和地上下翻转6~8次使菌体充分裂解,室温放置4~5分钟。
      温和地混合,不要剧烈震荡,以免基因组DNA剪切断裂!所用时间不应超过5分钟!以免质粒受到破坏。此时菌液应变得清亮粘稠。如果很浑浊,可能由于菌体过多,裂解不彻底,应减少菌体量。

    • 加7.5mL溶液N3,立即温和地上下翻转6~8次,充分混匀此时会出现白色絮状沉淀。12000×g离心10~15分钟,小心取上清至新管,避免吸取到漂浮的白色沉淀。
      加入溶液N3后应该立即混匀,以免产生SDS的局部沉淀。

    • 向上清中加入0.5体积异丙醇(约10mL)后充分颠倒混匀后分多次(每次不超过15mL)转入吸附柱DC中(吸附柱放入收集管中),12000×g离心1分钟,倒掉收集管中的废液。直到所有混合溶液通过此吸附柱。

    • 加入10mL漂洗液WB(请先检查是否已加入无水乙醇!),12000×g离心1分钟,弃掉废液。再加入10mL漂洗液WB,重复漂洗一次。

    • 将吸附柱DC放回空收集管中,最高速(最好大于12000×g)离心2分钟以干燥基质膜上残留乙醇。
      该步骤为彻底去除吸附柱中残留乙醇,残留乙醇抑制下游反应并且严重降低洗脱效率,降低质粒产量。

    • 取出吸附柱DC,放入一个干净的离心管中,在吸附膜的中间部位加1~2mL洗脱缓冲液EB(洗脱缓冲液事先在65~70℃水浴中预热可提高产量),室温放置2分钟,12000×g离心1~2分钟。
      推荐:为了增加质粒的回收效率,可将得到的溶液重新加入离心吸附柱中,室温放置1分钟,12000×g离心1~2分钟。洗脱两遍可提高浓度约10%。
      洗脱体积越大,洗脱效率越高,如果需要质粒浓度较高,可以适当减少洗脱体积,但是需注意体积过小降低质粒洗脱效率,减少质粒产量(最小不应少于1mL)。
     

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