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安必奇生物
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毕赤酵母基因组编辑
安必奇生物推出基于Red同源重组和CRISPR/Cas9的毕赤酵母基因组编辑服务。成熟的毕赤酵母(Pichia pastoris)编辑体系,助您成功实现基因敲除、基因插入和点突变。
基于Red同源重组法的毕赤酵母基因组改造
毕赤酵母基因敲除的传统方法是利用自身的Red系统对外源进入的DNA进行同源重组,从而实现目标基因的等位替换。通过设计靶基因的同源融合片段,将其克隆至自杀载体中,自杀载体通过接合输入到靶细菌。通过抗生素筛选细菌基因组靶位点整合有自杀载体的插入突变株。在第二轮反向选择压力下,只有毕赤酵母基因组发生第二次同源重组并丢失自杀质粒才可以存活。

基于CRISPR/Cas9平台的毕赤酵母基因组改造
CRISPR/Cas9系统是细菌和古细菌特有的一种天然防御系统,用于抵抗病毒或外源性质粒的侵害。安必奇生物科技推出CRISPR方法进行毕赤酵母基因组改造服务(包括基因敲除、定点突变、定点插入外源序列等)。相比于传统的基因敲除方法,该方法速度快,无痕;非常便于后续的实验研究。

研究内容
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毕赤酵母基因敲除(Pichia pastoris gene knockout)
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毕赤酵母基因敲入(Pichia pastoris gene knockin)
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毕赤酵母基因点突变(Pichia pastoris gene point mutation)
服务优势
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无痕编辑
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有效准确
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多基因编辑:能同时敲除多达3个基因
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便于筛选:不要求靶细菌具有抗生素抗性
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结果精确:测序鉴定
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周期快:3周交付
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定制服务:模式菌株或者宿主菌株
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定制服务:开发特殊物种的基因组编辑系统
客户提供信息
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毕赤酵母宿主菌株信息
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靶基因的ID或靶序列
下游应用
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抗生素及重要工业用酶
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发现新的基因功能
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优化代谢通路,提升代谢产物产量,实现工业化生产
参考文献:
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Selle K, Barrangou R. Harnessing CRISPR–Cas systems for bacterial genome editing[J]. Trends in microbiology, 2015, 23(4): 225-232.
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Zerbini, F., Zanella, I., Fraccascia, D., König, E., Irene, C., & Frattini, L. F., et al. (2017). Large scale validation of an efficient CRISPR/Cas-based multi gene editing protocol in Escherichia coli. Microbial Cell Factories, 16(1), 68.
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文献和实验基因编辑技术的飞速发展, 特别是近年来 CRISPR 技术的广泛应用,使得人类拥有了前所未有的改变和修饰基因组的能力。CRISPR 技术来源于细菌本身对抗噬菌体的「免疫系统」,这项技术利用单链引导 RNA (sgRNA) 和 Cas9 蛋白,可以在体内和体外简单、迅速、低成本实现基因编辑。利用 CRISPR 技术不仅可以对编码基因进行有效编辑和基因组的大规模筛选,而且还可以结合 NGS 对非编码 RNA(ncRNA)进行功能研究。CRISPR 技术已经广泛应用于全球各个实验室,几乎
基因组编辑技术是指可以在基因组水平上对 DNA 序列进行定点改造的遗传操作技术,其在基因功能研究和改造、生物医学和植物遗传改良等方面都具有重大的应用价值。科学家自 20 世纪 90 年代末就开始探索基因组定点编辑技术,但直到 2002 年,也仅在小鼠和果蝇等少数模式生物中实现了同源重组介导的基因组定点编辑,且因同源重组的效率很低,限制了其应用前景。进入 21 世纪后,随着蛋白质结构与功能研究的新突破和人工核酸内切酶 (engineeredendonuclease,EEN) 技术的出现,将特异
2012年,基因组编辑进入了crisper focus(使用目前基因组学中最严重的双关语),来自两个独立小组的演示——Jennifer Doudna和Emmanuelle Charpentier,以及Feng Zhang和Luciano Marrafini——细菌免疫系统等价物CRISPR/Cas,可有效用于基因组的靶向修饰。随后进行了更多的研究。当然,CRISPR/Cas系统只是我们多年来试图应用于基因组编辑的一系列分子生物学工具中的另一个。2011年,泰伦被《自然方法》誉为年度最佳方法
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