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哺乳动物基因条件性表达载体PiggyBac转座载体(LoxP

-Stop-LoxP介导)
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  • 哺乳动物基因LSL条件性表达piggyBac载体
  • 广州
  • 2026年05月01日
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      云舟生物科技(广州)股份有限公司

    • 服务名称

      提供定制载体

    概述

    PiggyBac质粒基因表达载体系统利用LoxP-Stop-LoxP(LSL)表达盒,在哺乳动物细胞和动物体内实现Cre介导的条件性基因激活表达。LSL表达盒包含三个重复的SV40 polyA,序列两端为LoxP位点。用户选择的启动子位于LSL表达盒的上游,而用户感兴趣的基因位于其下游。在Cre重组酶不存在的情况下,该表达盒完全阻断了目的基因的正常表达;当将Cre引入携带该载体的细胞中时,目的基因上游的LSL表达盒将会被删除,从而目的基因能够在用户选择的启动子下被永久激活表达。

    该载体不仅适用于体外细胞培养,更适用于转基因动物模型的构建。当携带这种载体的转基因动物与携带组织特异性表达Cre的转基因动物杂交时,产生的动物后代将在特定的细胞中组织特异性表达Cre,从而启动目的基因在该特定细胞中组织特异性表达。

    在细胞培养中使用该载体系统时,可将抗生素或荧光标记添加到载体中,使转染后的细胞可被筛选或可示踪以便于分离出已永久整合载体的细胞。

    PiggyBac系统包含两个载体,一个载体被称为辅助质粒,负责编码转座酶;另一个载体被称为转座子质粒,包含两个末端重复序列(TRs)以及两者之间的被转座区域,用户选择的启动子、表达盒和目的基因一起被克隆到这个转座区域。 当辅助质粒和转座子质粒共转染靶细胞时,辅助质粒产生的转座酶将会识别转座子的两个TR元件,然后将被转座区和两个TR元件插入到宿主基因组中。转座插入通常发生在包含TTAA序列的宿主染色体位点,并在转座子两侧出现TTAA重复序列。

    PiggyBac属于II类转座子,通过“剪切—粘贴”的机制移动,从一个地方转座到另一个地方,而不留下序列本身(恰好相反,I类转座子是通过“复制—粘贴”的方式移动)。由于辅助质粒是通过瞬时转染进入宿主细胞的,故会逐渐丢失。随着辅助质粒的丢失,转座子在宿主基因组中变成了永久整合。当这些宿主细胞再次被辅助质粒转染,整合的转座子会再次通过“剪切—粘贴”的机制移动。

    关于该载体系统和Cre介导重组的更多信息,请参考以下文献。

    参考文献 主题
    Mol Cell Biochem. 354:301 (2011) Review of piggyBac
    Cell. 122:473 (2005) Efficient transposition of the piggyBac (PB) transposon in mammalian cells and mice
    EMBO J. 12:2539 (1993) Transcription blocker prevent transcriptional interference
    J Biol Chem. 259:1509-14 (1984) Purification and properties of the Cre recombinase protein
    Genesis. 26:99-109. (2000) Review of the Cre/LoxP recombination system

     

    亮点

    该载体是为在哺乳动物细胞和动物体内实现Cre介导的条件性基因表达而设计的。目的基因的表达最初是沉默的,但通过与Cre重组酶的共表达后,目的基因上游的3x SV40 pA将会删除,从而目的基因能够在用户选择的启动子下被永久激活表达。

    优势

    基因的稳定激活:经过Cre重组酶处理后,阻断下游基因转录的3x SV40 pA将被永久删除,随后客户选择的启动子能够驱动的目的基因的正常表达

    外源基因的永久整合:常规质粒转染只能实现外源基因的瞬时表达,这种外源基因会随着宿主细胞的分裂而不断丢失,在快速分裂的细胞中显得尤为显著。相反,将PiggyBac转座子载体和辅助质粒一起转染到哺乳动物细胞中,由于转座子在转座酶的作用下,目的基因能稳定地整合到宿主细胞的染色体中,从而实现转座子载体上携带的目的基因在宿主细胞中永久表达。

    技术简单:通过常规转染即可把质粒转入细胞,相比起病毒载体需要进行病毒包装,过程更简单。

    载体容量大:我们的转座子载体总容量可达30 kb,其中质粒骨架只占3 kb,有足够大的容量可以放置客户所感兴趣的序列。


    不足之处

    转染细胞类型受限:PiggyBac载体进入细胞依赖于转染。不同类型的细胞,其转染效率差异非常大。非分裂细胞通常比分裂细胞更难转染,原代细胞比永生化细胞更难转染,一些重要的细胞类型转染难度更大,如神经元和胰岛β细胞。另外,质粒转染主要局限于体外应用,很少应用于体内实验(但可以应用于转基因动物模型制备)。以上因素在一定程度上制约了PiggyBac系统的应用。

    载体关键元件

    产品细节图片1

    5' ITR: 5' inverted terminal repeat. When a DNA sequence is flanked by two ITRs, the piggyBac transpose can recognize them, and insert the flanked region including the two ITRs into the host genome.

    Promoter: The promoter that will drive expression of your gene of interest after treatment with Cre recombinase.

    LoxP: Recombination site for Cre recombinase. When Cre is present the region flanked by the two LoxP sites will be excised.

    3x SV40 late pA: Repeats of the simian virus 40 late polyadenylation signal. This terminates transcription, preventing expression of the downstream gene of interest prior to excision with LoxP-flanked region with Cre.

    Kozak: Kozak consensus sequence. It is placed in front of the start codon of the ORF of interest because it is believed to facilitate translation initiation in eukaryotes.

    ORF: The open reading frame of your gene of interest is placed here.

    rBG pA: Rabbit β-globin polyadenylation signal. It facilitates transcriptional termination of the upstream ORF.

    CMV promoter: Human cytomegalovirus immediate early promoter. It drives the ubiquitous expression of the downstream marker gene.

    Marker: A drug selection gene (such as neomycin resistance), a visually detectable gene (such as EGFP), or a dual-reporter gene (such as EGFP/Neo). This allows cells transduced with the vector to be selected and/or visualized.

    BGH pA: Bovine growth hormone polyadenylation. It facilitates transcriptional termination of the upstream ORF.

    3' ITR: 3' inverted terminal repeat.

    Ampicillin: Ampicillin resistance gene. It allows the plasmid to be maintained by ampicillin selection in E. coli.

    pUC ori: pUC origin of replication. Plasmids carrying this origin exist in high copy numbers in E. coli.

    详情链接:https://www.vectorbuilder.cn/resources/vector-system/pPB_Exp_LoxP_Stop_LoxP.html

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    • 基因敲除技术

      特定方式(如特定的组织特异性)修饰的条件性突变小鼠。在“loxP floxed”小鼠,虽然靶基因的两侧已各装上了一个loxP,但靶基因并没有发生其他的变化,故“1oxP noxed”小鼠表型仍同野生型的一样。但当它与Cre 转基因小鼠杂交时,产生的子代中将同时带有“loxP floxed”靶基因和Cre 基因。Cre 基因表达产生的Cre 重组酶就会介导基因两侧的1oxP 间发生切除反应,结果将一个loxP 和靶基因切除。这样,靶基因的修饰(切除)是以Cre 的表达为前提的。Cre 的表达

    • 过表达都是相似的,敲除的方法却很多

      ;重组酶(FLP/Cre)的编码基因可以置于多种启动子的调控之下,从而使这种重组酶在生物体的不同细胞、组织、器官以及不同发育阶段或不同的生理条件下都能产生,进而发挥作用,达到条件性或诱导性基因敲除。   3  基因捕获技术   基因捕获(Gene Trap)是功能基因组学的研究方法,应用于表达基因的寻找。 其原理主要是: 利用随机插入突变进行基因敲除。基因捕获载体中包括一个无启动子的报道基因,只有转化到有启动子的(能够表达的)DNA序列

    • 基因打靶技术的新进展

      一、条件性打靶条件性基因打靶(conditional gene targeting)可定义为将某个基因的修饰限制于小鼠某些特定类型的细胞或发育的某一特定阶段的一种特殊的基因打靶方法。它实际上是在常规的基因打靶的基础上,利用重组酶介导的位点特异性重组技术,在对小鼠基因修饰的时空范围上设置一个可调控的“按钮”,从而使对小鼠基因组的修饰的范围和时间处于一种可控状态。利用Cre/LoxP和来自酵母的FLP—frt系统可以研究特定组织器官或特定细胞中靶基因灭活所导致的表型。通过常规基因打靶在基因组的靶位

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