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EMSA PAGE, 4%, 10孔

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  • ¥1260
  • 万生昊天/WSHT
  • E301E4T
  • 美国
  • 2025年12月22日
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      100

    • 英文名

      EMSA PAGE, 4%, 10wells

    • 保质期

      2个月

    • 供应商

      上海万生昊天生物技术有限公司

    • 保存条件

      4℃

    • 规格

      10片/盒

    拆胶演示视频

    胶板尺寸: 98×84×4.1mm
    凝胶尺寸:  81×74×1.5mm
    浓度: 4%
    孔数:10 wells
    上样量: 60ul
    电泳缓冲液: 0.5X TBE buffer
    电泳条件:  100V, 30-90min
    保存: 4℃ 2个月
    应用: EMSA

    产品简介:
    凝胶迁移实验有称凝胶阻滞实验或电泳迁移率实验(EMSA,electrophoretic mobility shift assay),是一种用于蛋白与核酸相互作用的技术。最初是用于转录因子与启动子相互作用的验证性实验,也可应用与蛋白-DNA、蛋白-RNA互作研究。
    万生昊天生产的Glass gel® EMSA PAGE是一款安全、快捷、高性能的预制凝胶。
    • 采用自动化的灌胶生产技术,确保了产品质量的高稳定性和重复性。
    • 采用玻璃胶板,有效减少蛋白非特异性吸附,使蛋白条带更为尖锐,清晰。
    • 胶夹打开极为轻松,只需用刀片在胶夹一侧轻轻划一下即可打开。
    • 兼容市场上主流的mini电泳槽,如BIORAD, Invitrogen, 天能和君意东方等
     
    货号 浓度 孔数 最大上样量 电泳液
    E301E4T 4% 10 60μl 0.5×TBE
    E301E6T 6% 10 60μl 0.5×TBE
    E301E4F 4% 15 30μl 0.5×TBE
    E301E6F 6% 15 30μl 0.5×TBE

    使用说明:
    1.准备样品:将样品和EMSA loading buffer(5×)按照4:1混合均匀。
    2.准备0.5×running buffer:取100ml的5×TBE buffer,加入去离子水至1L,制备成0.5×TBE buffer。
    3.将预制胶装入兼容的电泳槽中,加入电泳缓冲液,再缓慢地将梳子拔出。
    4.上样:在梳孔内加入适当浓度和体积的DNA样品。
    5.电泳条件:100 V, 30~90 min(电泳时间取决于凝胶浓度)
    6.电泳结束,取出凝胶。

    产品保存:4℃下储存,可存放2个月。

    拆胶:
    1.先沿侧边胶处简单划一刀(或先将玻璃板侧边多余封胶材料去除);
    2.用刀在侧边胶处,沿着玻璃板和玻璃条的缝隙切开封胶材料(箭头处),轻轻打开玻璃板;
    3.取胶时,需在凝胶和两侧玻璃条之间沿着玻璃条划一刀,防止取胶时发生粘连使凝胶破碎。

    注意事项
    1.仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。
    2.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
    产品细节图片1

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    图标文献和实验
    相关实验
    • 非放射EMSA实验技术讨论

      还是两端都标记,这样才能更好的提高灵敏度, 国内的标记技术我还不是很了解,我们这边的探真都是国外定做的,还算可以,其制作程序如下: 合成寡核苷酸---标记生物素---纯化---退火合成双链.也是一个比较复杂的过程. 4.  EMSA实验技术: 这一点主要是操作的细节问题! 下面会更细的谈到. 技术要点: 关于技术要点,我在这里只提一下关键的几点需要注意的细节操作,其他的照正常程序就可以了!   1.  制胶 必须是非变性PAGE凝胶,我们实验

    • 关于EMSA用的胶的问题

      domains adjacent to their histone fold motifs for association with TBP basic residues. Nucl.Acids.Res., 25, 2174-2181. 后来也有人开始尝试用agarose进行EMSA的实验,见我上一贴里的文章,但是图像做出来没有PAGE分的那么开。但是操作上要简单很多。我们实验室也尝试过用agarose,没有什么大的问题。

    • Electrophoretic Mobility Shift Assay(EMSA)

      , bottom and side with binder clips• Lie on a slight angle (can use microfuge tube rack)  Native PAGE Preparation:Add in this order63.25ml dH2O3.75ml 10x TBE7.5ml 40% 37:5:1 acrylamide0.5ml 10% APS50μl TEMED0.5x TBE: 50ml 10x TBE,950ml dH2O  Gel Preparation Before Sample

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