- ￥1500
- ATCC、DSMZ、ECACC、RIKEN
- 江苏
- CL1305
- 2025年12月20日
企业认证
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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 英文名：
R-1059-D
- 库存：
100万
- 供应商：
欣润生物
- 肿瘤类型：
是
- 细胞类型：
细胞系
- ATCC Number：
CL1305
- 品系：
人
- 组织来源：
详见说明
- 相关疾病：
详见说明
- 物种来源：
人源
- 免疫类型：
不详
- 细胞形态：
上皮型
- 是否是肿瘤细胞：
否
- 器官来源：
详见说明
- 运输方式：
新鲜或干冰
- 年限：
成年
- 生长状态：
贴壁生长
- 细胞名称： [R-1059-D]细胞（人骨肉瘤细胞）
- 形态：上皮型，贴壁生长
- 含量：>1x106 个/瓶
- 污染：支原体、细菌、酵母和真菌检测为阴性
- 规格：T25瓶或者1mL冻存管包装
二、细胞接收后的处理：
1、贴壁细胞
- 收到T25方瓶细胞后，请检查是否漏液，如果漏液，请拍照片发给我们（冻存管细胞收到后直接37℃水浴复苏或直接放置于液氮中长期储存）。
- 请先在显微镜下确认细胞生长状态，去掉封口膜并将T25瓶置于37℃培养约2-3h。
- 弃去T25瓶中的培养基，换用新鲜的完全培养基。
- 如果细胞长满（90%以上）请及时进行细胞传代。
- 接到细胞次日，请检查细胞是否污染，若发现污染或疑似污染，请及时与我们取得联系。
2、悬浮细胞
- 收到细胞后，请检查是否漏液，如果漏液，请拍照片发给我们。
- 请先在显微镜下确认细胞生长状态，去掉封口膜并将15ml离心管置于37℃培养约2-3h。
- 1200rpm离心5min，弃去15ml离心管中的培养基，细胞沉淀用新鲜的完全培养基重悬并培养。
- 如果细胞长满（90%以上）请及时进行细胞传代。
- 接到细胞次日，请检查细胞是否污染，若发现污染或疑似污染，请及时与我们取得联系。
本公司的细胞培养操作规程，供参考
一、培养基及培养冻存条件准备：
- 准备MEM培养基，90%；优质胎牛血清，10%。
- 培养条件： 气相：空气，95%；二氧化碳，5%。 温度：37℃，培养箱湿度为70%-80%。
- 冻存液：90%血清，10%DMSO，现用现配。液氮储存。
对于贴壁细胞，传代可参考以下方法：
- 弃去培养上清，用不含钙、镁离子的PBS润洗细胞1-2次。
- 加2ml消化液（0.25%Trypsin-0.53mM EDTA）于培养瓶中，置于37℃培养箱中消化2-3分钟，然后在显微镜下观察细胞消化情况，若细胞大部分变圆并脱落，迅速拿回操作台，轻敲几下培养瓶后加入3ml此细胞的培养基终止消化。
- 轻轻吹打后吸出，移入15ml离心管中，在1200RPM条件下离心5分钟，弃去上清液，加入1mL培养液后吹匀。
- 移入到事先准备好的含有5ml培养基的T-25培养瓶中或含有14ml培养基的T-75培养瓶中培养。
3）细胞冻存：待细胞生长状态良好时，可进行细胞冻存。贴壁细胞冻存时，先要消化处理并进行细胞计数。消化方法按照细胞传代方法的1-3步骤进行，最后的重悬液使用血清。悬浮细胞直接计数后离心，用血清重悬浮，加DMSO至最终浓度为10%。加入DMSO后迅速混匀，按每1ml的数量分配到冻存管中。本公司按每个冻存管细胞数目大于1X106个细胞冻存。
注意事项：
1. 收到冻存管细胞后，若发现干冰已挥发干净、冻存管瓶盖脱落、破损及细胞有污染，请立即与我们联系。
2. 所有动物细胞均视为有潜在的生物危害性，必须在二级生物安全台内操作，并请注意防护，所有废液及接触过此细胞的器皿需要灭菌后方能丢弃。
3. 细胞用途：仅供科研使用。
发货方式：
复苏后发货：我们复苏细胞后发货，货期一周左右，免运费。（气温较好建议复苏后发货）
冻存发货(干冰运输）：需额外增加干冰运费，选择干冰运输的我们发两管细胞，为了保证客户接种可靠性多发一管。（气温低于0℃须冻存发货）
细胞发货采取专业的运输包装，并选择最快捷的运输方式（顺丰速运或其他空运快递）
重组野生型p53基因转染人骨肉瘤细胞株体外实验
目的:将外源性野生型p53基 因导入人骨肉瘤细胞株,研究野生型p53蛋白在诱导瘤细胞凋亡中的作用.方法:用DNA转染技术将7重组野生型p53基因PM47质粒导入人骨肉瘤细胞株 HOS8603中,用PCR技术监测外源性p53基因在瘤细胞中存在的稳定性;用免疫组化方法检测在地塞米松的诱导下瘤细胞中p53的表达情况;用相差 显微镜去观察凋亡瘤细胞的形态特点;用细胞凋亡原位检测技术标记并统计凋亡的瘤细胞数.结果:成功地将重组野性型p53基因PM47质粒导入人骨肉瘤细胞 株HOS8603中,在gpt选择培养基中培养两周后,分离生长出阳性细胞克隆;经PCR证实外源性p53基因在瘤细胞内稳定存在并可随瘤细胞分裂。
dihydroarteminin,对人骨肉瘤细胞株143B增殖和凋亡的作用
目的 观察(dihydroarteminin,DHA)对人骨肉瘤细胞143B的增殖和凋亡的影响以及可能的机制.方法 体外培养人骨肉瘤细胞株143B;MTT比色法和克隆形成实验检测不同浓度DHA对骨肉瘤细胞存活与克隆形成能力的影响.Hoechst 33258染色法观察细胞凋亡的形态变化.构建β-Catenin荧光素酶报告基因(β-Catenin-Luc,p-Top)检测DHA作用143B后 细胞内β-Catenin活性变化.不同浓度的DHA作用后,Western blot检测与细胞增殖(如PCNA,Cyclin D1,c-Myc),凋亡(如Bad,Bcl-2,Caspase-3)密切相关的标志物蛋白质表达变化.结果 DHA作用于143B细胞24 h后,MTT结果显示143B细胞的增殖活性受到明显抑制,且其克隆形成能力减弱(P<0.05),在DHA浓度达35 μmol·L-1时,抑制效率最明显.Western blot结果显示PCNA表达下调;而促凋亡蛋白Bad和 Caspase-3表达上调,Bcl-2蛋白表达明显减弱.结论 dihydroarteminin具有较明显的抑制人骨肉瘤细胞的增殖且促进其凋亡的作用,可能通过下调细胞增殖相关蛋白PCNA,Bcl-2和上调促凋亡蛋白Bad和 Caspase-3,启动凋亡程序,致143B细胞发生凋亡.
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文献和实验Chicken intestinal epithelial cells were obtained from NEWGAINBIO company. Cells were cultured on 37℃, with 5% CO2, in the Ham’s F-12 Nutrient (DMEM/12) that contained the following supplementations: fetal bovine serum (5%), in-sulin (5 µg/mL), transferrin (5 µg/mL), selenium (5 ng/mL), epidermal growth factor (5 ng/mL) and penicillin-streptomycin (100–100 U/mL) for cell culturing (full DMEM/12). Experiments were performed with chicken intestinal epithelial cells and working solutions were prepared with plain DMEM/12 without supplementation. For the investigations, cells were seeded onto 96-well, 24-well or 6-well polystyrene cell culture plates.
Primary hVICs (passage 2) were cultured to 50–60% confluence and infected with pGMLV-SV40T-puro lentivirus (NewgainBio, Wuxi, China) at a multiplicity of infection of 80 supplemented with 5 µg/mL polybrene (Sigma-Aldrich, Buchs, Switzerland).
Tissue was cultured until cells became visible around the tissue, and when the fusion reached 90% (FIGURE 1A) §ask ¦lled with the prepared culturing medium was sent to the company for further immortalisation. Cell immortalisation was done for cell stability and longer-term use. Immortalised cells were cultured with 10% FBS and 1% PS in the DMEM medium. After the cells multiplied and merged, they were routinely passed and grown ( NEWGAINBIO Inc. Wuxi, Jiangsu, China) (FIGURE 1B-C).
Mouse primary cultured renal vascular ECs and VSMCs were obtained from Newgainbio company, which were tested by Factor VIII and α-smooth muscle actin (α-SMA), the marker of ECs and VSMCs. RNeasy Mini Kit was used for RNA extraction, and the above protocols were repeated.
Porcine primary colon epithelial cells (Newgainbio company, Wuxi,China) were cultured in Dulbecco's Modified Eagle's Medium (Solarbio, Beijing, China) containing 10 % fetal bovine serum (BioInd, Kiryat shmona, Lsrael) at 37 ◦C and 5 % CO2 humidity.
