猪圆环病毒2型(PCV-2)单重荧光PCR检测试剂盒

猪圆环病毒2型(PCV-2)单重荧光PCR检测试剂盒
一、简介：
本试剂盒用一对猪圆环病毒2型特异性引物，结合特异性荧光探针，用荧光PCR技术对猪圆环病毒2型DNA进行体外扩增检测，用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。本试剂盒中猪圆环病毒2型的探针报告基团为FAM。

二、猪圆环病毒2型(PCV-2)单重荧光PCR检测试剂盒用途：
本试剂盒适用于猪病料、鼻咽拭子、血液等样本中猪圆环病毒2型(PCV-2)的特异检测。适用于猪圆环病毒2型(PCV-2)感染的辅助诊断、监测及流行病学调查，其检测结果仅供临床参考。

三、试剂盒组成：(48T)
组份 数量 规格
猪圆环2型PCR反应液(PCV-2-qPCR MIX) 1管 720μL/管
DNA抽提液(DNA Extraction) 2管 1.5mL/管
阴性对照(NTC) 1管 50μL/管
阳性对照(JEV-PTC) 1管 50μL/管

四、猪圆环病毒2型(PCV-2)单重荧光PCR检测试剂盒储存条件及有效期：
本试剂盒于-20℃以下保存，有效期为6个月。

五、荧光PCR仪器适用范围：
ABI系列，Roche系列等荧光定量PCR检测仪等。

六、样品的采集与DNA提取
6.1 样品的采集
按照相关标准采集。标本短期内可保存于-20℃，长期保存可置-80℃，但不能超过6个月，标本运送应采用0℃冰壶。
6.1.1 血清：用一次性无菌注射器抽取静脉血2mL，注入无菌的干燥玻璃管，室温(22-25℃)放置30-60min，血标本可自发完成凝集析出血清，或直接使用水平离心机，3000rpm离心5min，吸取上层血清，转移至1.5mL灭菌离心管中备用。
6.1.2 血浆：用一次性无菌注射器抽取静脉血2mL，注入含EDTA2Na(乙二四乙酸二钠)或柠檬酸钠抗凝剂的玻璃管，立即轻轻颠倒玻璃管混合5-10次，使抗凝剂与静脉血充分混匀，5-10min后即可分离出血浆，转移至1.5mL灭菌离心管中备用。
6.1.3 拭子、分泌物等样品：在装有拭子或分泌物的离心管中加入500μL PBS或生理盐水，剧烈振荡30s。
棉拭子尽量挤出液体转移到无DNA酶污染的离心管中备用。
6.1.4 病灶组织样品：称取组织约0.1g于研磨器或组织匀浆器中研磨(最好置于冰上或加入液氮)，再加1mL生理盐水研磨至无块状物，然后将样品转至1.5mL灭菌离心管中备用。
6.2 DNA提取
可采用PCR试剂盒配备的DNA抽提液，按以下说明进行DNA核酸的粗提。也可采购生产的DNA提取试剂盒(过柱法-荧光配套)或其他合适的商业化产品，并按照相应试剂盒说明进行操作。
6.2.1 纯培养物：取培养物50μL与50μL DNA抽提液充分混匀，100℃恒温10min，13000rpm离心
3min，取上清5μL 进行PCR 反应。
6.2.2 粪便样品：挑取米粒大小粪便于灭菌离心管中，加入0.5mL 生理盐水，振荡混匀，取50μL样品，加入50μL DNA 抽提液充分混匀，100℃恒温10min，13000rpm 离心3min 取上清5μL 进行PCR 反应。
6.2.3 组织研磨液、拭子、血清、血浆及其他液体标本：取处理好的标本50μL，加入50μl DNA抽提液充分混匀，100℃恒温10min，13000rpm 离心3min 取上清5μL进行PCR 反应。
 注：阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取)，直接取5μL加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高，建议最后在样品制备区域加入阳性对照。

七、猪圆环病毒2型(PCV-2)单重荧光PCR检测试剂盒检测步骤：
7.1 试剂的准备
从试剂盒中取出荧光qPCR 反应液(PCV-2-qPCR MIX)，室温融化并振荡混匀后，10000rpm 离心10s。
设所需要的PCR 反应管管数为N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照)，每个测试反应体系配制如下表：
试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
荧光PCR反应液 15µL N×15µL
计算好各试剂的使用量，加入一适当体积洁净离心管中，充分混匀，10000rpm 离心10s，向设定的N 个PCR反应管中分别加入15μL，向管中加入处理后样品/阴性对照(NTC)/阳性对照(PCV-2-PTC)5μL，10000rpm 瞬时离心10 秒。
7.2 qPCR反应条件
将各反应管放入实时荧光PCR仪器的反应槽内。
推荐循环条件:
1循环 50℃ for 2 min
预变性 1循环 95℃ for 10 min
PCR扩增 40循环 95℃ for 15 sec
60℃ for 60 sec
在60℃延伸时收集荧光信号。报告基团：设置为FAM。淬灭基团：NONE，请勿选择ROX参比荧光。

八、结果分析：
8.1 结果分析条件设定
直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整，以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
8.2 试验成立判定
(1)阴性对照(NTC)：不应产生任何的扩增曲线。
(2)阳性对照(PCV-2-PTC)：均产生扩增曲线。
(3)以上条件应同时满足，否则，此次试验视为无效。
8.3 结果判定
(1)在试验成立的条件下，Ct值≤35的样本为阳性，表明PCV-2核酸阳性。
(2)Ct值显示为无的样本为阴性样本，表明PCV-2核酸阴性。
(3)如果35＜Ct值≤40，判为可疑样品。对于可疑样品，先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线，则为可疑阳性，否则判为阴性。
(4)对于可疑阳性样品，重新抽提核酸，再次进行PCV-2 qPCR检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线，判为样本阳性，表明PCV-2核酸阳性；否则判为样本阴性。

九、注意事项：
(1)初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
(2)所有使用的离心管应高压灭菌，而且必须不含DNA 酶。
(3)PCR 操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR 扩增区等)，防止实验室污染。
(4)样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行，以免污染。
(5)试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。