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p-NPP碱性磷酸酶活性检测试剂盒(显色法)

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    p-NPP碱性磷酸酶活性检测试剂盒(显色法)
    Alkaline Phosphatase Assay Kit
    产品关键词: 
    Phosphatase, Alkaline碱性磷酸酶;ALP/AKP;对Nitrophenol磷酸盐(pNPP);偶氮偶联法;显色法(定量);染色法(定性); 
    碱性磷酸酶(Phosphatase, AlkalineALP/AP/AKP/ALKP/ALPaseEC 3.1.3.1),是一种含两个相同亚基的二聚体,也是一种约含12%碳水化合物(6%己糖和6%其他中性糖)的糖蛋白,每个ALP分子含4个锌离子和4个二硫键。常见的碱性磷酸酶ALP包括肠道碱性磷酸酶(如小牛肠来源,calf intestinal)、胎盘碱性磷酸酶、非组织特异性碱性磷酸酶等。  
    碱性磷酸酶(ALP)活性的变化与一系列生理和病理事件紧密关联,比如骨骼发育、骨骼相关疾病、妊娠相关疾病和炎症性肠病等。正因如此,ALP被用作衡量生理特征或疾病的参照指标。另外,ALP活性检测在环境监测、食品质量控制等方面也呈现重要作用。 
    1. 干细胞如诱导多潜能干细胞iPSALP活性很高,则ALP常被用作iPS诱导成功的标志; 
    2. 分化的结肠癌细胞内ALP活性显著提高,则ALP常被当做结肠癌细胞分化程度的指标(定性/定量); 
    3. 血清中ALP水平提高,被称作高碱性磷酸酶血症,此症状被认为和恶性胆管阻塞、原发性胆管硬化、原发性硬化胆管炎、肝淋巴瘤和肝肉瘤等肝胆疾病密切相关; 
    4. ALP是成骨细胞的副产物,血清中ALP活性升高和骨头发育密切关联; 
    5. 血清ALP活性过低也与一些疾病相关; 
    6. 儿童和孕妇血清内ALP活性较常人高一些;血清中ALP活性范围在20-140U/L 
    原理: 
    Nitrophenol磷酸盐(pNPP)是一种常用的碱性磷酸酶(ALP)显色底物,碱性条件下能被ALP催化生成对硝基酚(para-nitrophenolp-nitrophenol),呈黄色产物,可在400-415nm检测到吸光度。产物黄色越深,代表ALP活性越高,反之则酶活性越低。则通过比色分析可定量检测ALP水平。 
    反应式如下: 
    检测对象: 
    细胞或组织裂解液或匀浆液、血清、血浆、尿液等样品内源性碱性磷酸酶活性。 
     
    品牌 名称 货号 规格 目录价(元)
    Anaspec SensoLyte®pNPP碱性磷酸酶检测试剂盒*比色* AS-72146 500T 2250
    sigma p-NPP Nitrobenzene磷酸二钠盐     N3129-5g 5g 980
    sigma p-NPP Nitrobenzene磷酸二钠盐     N3129-25g 25g 3767
    VWR 分装 p-NPP Nitrobenzene磷酸二钠盐   0364-1g 1g 69元
    VWR 分装 p-NPP Nitrobenzene磷酸二钠盐   0364-5g 5g 290元
    sigma Triton-X-100   V900502 500ML 113元




    试剂盒组分: 
    组份 描述 数量
    Component A pNPP, colorimetric alkaline phosphatase substrate 25ml
    Component B 10X Assay buffer 50 mL
    Component C Stop solution 25 mL
    Component D Triton-X-100 500 uL
    Component E Alkaline Phosphatase Standard, Calf Intestine 10 ug/mL, 50 uL
      产品文献: 
    Knopp, M. et al. (2015). Amelioration of the fitness costs of antibiotic resistance due to reduced outer membrane permeability by upregulation of alternative porins MolBioEvol32doi:10.1093/molbev/msv195

    Dai, J. et al. (2014). Cabozantinib Inhibits Prostate Cancer Growth and Prevents Tumor-Induced Bone Lesions. Clin Cancer Res20, 617. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-13-0839.

    Mah, YJ. et al. (2014). The effect of epigallocatechin-3-gallate (EGCG) on human alveolar bone cells both in vitro and in vivo. Archives Oral Biol59, 539.

    Pauksch, L. et al. (2014). Biocompatibility of silver nanoparticles and silver ions in primary human mesenchymal stem cells and osteoblasts. Acta Biomat10, 439.

    Rebollo, A. et al. (2014). Liquid fructose downregulates Sirt1 expression and activity and impairs the oxidation of fatty acids in rat and human liver cells. Biochim Biophys Acta -Mol Cell Biol Lipids1841, 514.

    Yamano, S. et al. (2014). The effect of a bioactive collagen membrane releasing PDGF or GDF-5 on bone regeneration. Biomat35, 2446.

    Choi, B. et al. (2012). Facile surface functionalization with glycosaminoglycans by direct coating with mussel adhesive protein. Tissue Eng Part C Meth18, 71.

    Kamiyama, M. et al. (2012). The establishment of a primary culture system of proximal tubule segments using specific markers from normal mouse kidneys. Intl J Mol Sci13, 5098. doi:10.3390/ijms13045098

    Kim, S-M. et al. (2012).Gelatin-layered and multi-sized porous β-tricalcium phosphate for tissue engineering scaffold. Nanoscale Res Lett7, 78. doi:10.1186/1556-276X-7-78Open Access

    Martinez-Conesa, E. et al. (2012). Characterization of ocular surface epithelial and progenitor cell markers in human adipose stromal cells derived from lipoaspirates. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci53, 513-520.

    Sola, A. et al. (2012). Heat treatment of Na2O-CaO-P2O5-SiO2 bioactive glasses: Densification processes and postsintering bioactivity. J Biomed Mat Res100A, 305. doi:10.1002/jbm.a.33276

    Sun, J. et al. (2012). Biomimetic interpenetrating polymer network hydrogels based on methacrylated alginate and collagen for 3D pre-osteoblast spreading and osteogenic differentiation. Soft Matter8, 2398.

    Sunada, K. et al. (2012). Highly efficient antiviral and antibacterial activities of solid-state cuprous compounds. J Haz Mat235-236, 265. doi:10.1002/jbm.a.33276

    Thorpe, M. et al. (2012). The external mechanical environment can override the influence of local substrate in determining stem cell fate. J Biomechanics45, 2483.

    Vinardell, T. et al. (2012). Hydrostatic pressure acts to stabilize a chondrogenic phenotype in porcine joint tissue derived stem cells. Euro Cells and Mat23, 121.

    Williams, C. et al. (2012). A comparison of human smooth muscle and mesenchymal stem cells as potential cell sources for tissue-engineered vascular patches. Tissue Eng Part A.

    Abedini, S. et al. (2011). Effects of cryopreservation with a newly-developed magnetic field programmed freezer on periodontal ligament cells and pulp tissues. Cryobiol10.1016/j.cryobiol.2011.03.001.
    。。。。

     

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