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        【求助】如何提取细胞中的cAMP?和普通蛋白的裂解buffer一样么?

        丁香园论坛

        4241
        请教:如何提取细胞中的cAMP?和普通蛋白的裂解buffer一样么?
        知道和裂解普通蛋白的buffer不一样了,要用TCA将蛋白沉淀下来除去,但是后续报道有用乙醚洗然后用60度氮蒸干的,但是这个我们实验室没有条件做,还有其他的后续处理方法么?
        如果实验室有进口的探头式超声破碎仪的话,直接加PBS超声破碎悬浮细胞即可。有时要加磷酸二酯酶抑制剂。

        贴壁细胞可以用一般的蛋白裂解Buffer,有时要加磷酸二酯酶抑制剂。

        关于是否需要乙酰化的问题,不同的试剂盒有不同的要求,主要取决于抗体是否灵敏,也取决于最后检测的方法。一般乙酰化之后可以提高10倍的检测灵敏度。如果抗体灵敏,可以免去乙酰化的那一步,太容易引入误差。
        另外,如果用荧光法、发光法检测碱性磷酸酶或者辣根过氧化物酶的话,也没必要进行乙酰化,因为荧光法、发光法检测比显色法检测灵敏度高。

        另外,Promega公司有基于培养细胞的cAMP检测试剂盒出售,不是基于ELISA法的,比ELISA法更方便。
        我用的是125I的RIA kit,我们核同位素室的老师说,照常处理你的细胞,离心去上清后加入0.4ml 1M的高氯酸就可以了。不过要预实验一下,摸索浓度。
        我这几天也在做细胞内cAMP和cGMP检测。
        普通的Lysis buffer 就可以,但是你得加IBMX抑制PDE的活性。不知道你是想做western还是干吗?
        如果你是要测cAMP的量,目前也有其他方法。
        真的很不错啊啊
        我看到的方法有两种:
        1)一种是cayman公司提供的试剂盒说明书里讲到的:
        用0.1M HCL裂解细胞(该试剂可以抑制内源的磷酸脂酶活性),室温孵育20分钟,然后用吸头轻轻的上下混匀几次将细胞裂解。接下来1000G 离心10分钟,取上清用于检测。(需要稀释至少2倍以上)
        2)另一种是RND公司提供的试剂盒说明书里讲到的:
        用试剂盒自带裂解液悬浮细胞至107CELLS/ML,然后采用-20度冻融循环几次,直至裂解后的细胞呈蓝色。600G 离心10分钟(4度),取上清用于检测。(需要稀释至少2倍以上)
        请问用HCL裂解细胞会不会也破坏CAMP呢?
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