PE-Cy7荧光补偿微球

多色流式实验荧光染料的选择

nm)的带通滤片(BP, Band Pass)。 b. 以eFluorTM605NC为例:其荧光发射峰有335nm, 405nm和407nm,最大发射波长为605nm ，流式细胞仪检测时需605/40 (即检测波长范围为605± 20nm)的带通滤片。 注释： 表中数值表示各荧光检测通道间的荧光补偿值(compensation),单位为%。 b. 以FITC和PE为例：假如我们用FLi-%FLj，表示从第i通道扣除从第j通道漏过来的荧光时，设置的荧光补偿值；那么流式细胞仪的FL1通道检测

有关流式荧光补偿

（如五色、六色、七色等）和复合荧光素（如PE-Cy7、APC-Cy7等），因为这时的补偿往往难度较大。各型号的流式仪器均能使用。Compbeads使用后可以将流式的条件保存，方便下次做同样的荧光染色搭配时参考用。 正确的荧光补偿在将弱阳性群体与阴性群体正确区分中有极其重要的作用；荧光补偿不足会导致弱阳性群体是假阳性颗粒增多，而过度补偿则会丢失弱阳性群体而导致假阴性。 荧光补偿是指修正荧光光学信号在探测器之间相互渗漏并被数字化检测的过程。自单激光双色分析出现后此过程变得十分重要。每种荧光素分子

对外周血中人自然杀伤（NK）细胞群的表型表征分析

，分别检查各项单色补偿值，并更改增益值。3. 获取单色补偿值（采用 VersaComp 微球，产品目录号：B22804）。4. 创建新实验。5. 导入先前针对 BV421、BV510、BV605、BV650、FITC、PE、PE-Cy7、APC、AF700 以及 APCAF750 创建的补偿设定值。6. 创建以下图区：CD45-SSC，圈选 CD45+ 细胞；FSC-SSC，圈选淋巴细胞；FSC-A-FSC-W，圈选单细胞；被排除细胞与 CD7，圈选 exclusion -/CD7+ 细胞；CD