2×SYBR qPCR MasterMix北京厂家现货

2×SYBR qPCR MasterMix北京厂家现货

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  • ¥120 - 1850
  • 百奥莱博
  • RFT094-TZF
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  • 2025年07月06日
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      北京百奥莱博科技有限公司

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      阴凉干燥

    特别声明:本产品及我公司所售其他产品均为科研类试剂产品,严禁用于药物、医疗及其他非科研用途。

    北京百奥莱博专业生产供应2×SYBR qPCR MasterMix北京厂家现货,我公司销*(代"售")全品类的分子生物学试剂,价格优惠,欢迎广大科研工作者垂询订购。


    名称:2×SYBR qPCR MasterMix北京厂家现货
    规格:1ml|5×1ml|20×1ml
    产地:国产|进口
    编号:RFT094
    本制品是采用SYBR Green I嵌合荧光法进行Real Time PCR的专用试剂。已经将 Hot-Start DNA聚合酶、dNTP、特殊稳定剂、优化的反应缓冲液和 SYBR? Green I 等试剂预混成一种适合 Real Time PCR反应检测用 2×MasterMix试剂,具有灵敏度高、特异性强、稳定性好等特点。使用时只需加入模板、引物和水,便可在宽广的定量区域内得到良好的标准曲线,对目的基因进行准确定量检测,重复性好,可信度高。以50μl qPCR反应体系为例,每次使用25μl 2×MasterMix,1ml可做40次 50μl qPCR反应。

    使用方法:
    1、冰浴中彻底融化2×qMasterMix,彻底混匀后快甩离心将溶液收集到管底。
    2、按照下表在0.2ml PCR管中制备反应体系:

     
      50μl反应体系 20μl反应体系 终浓度
    2×qPCR MasterMix 25μl 10μl
    上游引物 10μM 1μl 0.4μl 0.2μM
    下游引物 10μM 1μl 0.4μl 0.2μM
    ROX Slolution I or II(50×) 1μl or 不加 0.4μl or 不加 x
    模板 ×μl xμl 10pg-100ng
    补至50μl 补至20μl  

    3、快甩离心将反应液收集到管底。
    4、检测片段大于300bp,qPCR仪上推荐执行以下程序(三步法):
    步骤 温度 时间 循环数
    初始变性 95℃ 10min* 1
    变性 95℃ 15sec 40
    退火 55℃ 30sec
    延伸 72℃ 30sec

    检测片段小于300bp,qPCR仪上推荐执行以下程序(两步法):
    步骤 温度 时间 循环数
    初始变性 95℃ 10min* 1
    变性 95℃ 15 sec 40
    退火和延伸 60℃ 60 sec

    注:由于本MasterMix中的Hot-start DNA聚合酶是经过化学修饰封闭的,初始变性95℃ 10分钟是必须的,时间过短会降低酶的活性。

    实验结果分析
    反应结束后加做融解曲线,以区分扩增产物及引物二聚体。根据扩增曲线和融解解曲线结果可进行PCR定量标准曲线的制作。

    注意事项
    1、本制品中不含内参染料ROX,ROX染料单独供应。客户并根据qPCR仪器技术指导决定是否需要加ROX内参染料,用于消除信号本底以及校正孔与孔之间产生的荧光信号误差。
    2、本制品含SYBR Green I,强光下易分解,使用时避免长时间强光照射本制品。
    3、建议在冰上配制qPCR反应液,再放入qPCR仪器中扩增。可以提高扩增特异性,减少背景。
    4、-20℃下保存时间较长,有微量沉淀产生,充分混匀后不影响使用。本制品已经优化了反应缓冲液中的Mg2+浓度,无需再调节Mg2+浓度。
    5、模板DNA:用本产品,cDNA、基因组DNA、质粒DNA、病毒DNA等都可作为模板。在添加DNA模板时请注意模板量对PCR扩增的影响。本产品建议添加量为:cDNA添加量不应超过总反应体系的10%;基因组DNA为模板时,为避免在高浓度区域出现线性差的情况,请注意添加量小于500ng;病毒DNA也可作为PCR模板,添加时请以300ng为上限;由于质粒DNA浓度和拷贝数很高,在添加PCR模板之前最好进行稀释梯度试验,以便确定合适的质粒DNA拷贝数。
    6、引物:
    建议每条引物工作浓度200 nM~800 nM;为得到高灵敏度定量性的数据,引物的设计非常重要。以下列举了设计引物时需注意的一般事项。
    a.引物长度请设定为18bp~30bp、GC含量为40%~65%;
    b.扩增片段一般小于300bp,如可能请尽量设定在80bp~150bp。过长的片段容易导致扩增效率降低;
    c.如设计mRNA为目的片段的引物,设计应尽量横跨内含子,以防止基因组DNA的扩增而引起假阳性;
    d.请尽量选择Tm为65℃~67℃;
    e.A、G、C、T整体分布尽量均匀。不要有部分的GC rich或AT rich(特别是3"端)。避开T/C(Polypyrimidine)或A/G(Polypurine)的连续结构;
    f.避开引物内部或两条引物之间有3个碱基以上的互补序列。二条引物间的3"末端避开有2个碱基以上的互补序列;
    g.引物设计完成后要使用BLAST检索确认引物的特异性。
    此外,引物的纯化纯度对反应特异性有很大的影响。经过一般纯化、纯度较低的引物荧光强度散乱,容易产生非特异性产物,致使熔解曲线出现杂峰。请尽可能使用HPLC级别纯化,至少要用经Cartridge(OPC)级别以上纯化的引物。
    7、对照设计:
    a.No template control(NTC):在qPCR反应体系中仅仅缺少模板。用以检测有无二聚体和试剂有无污染。
    b.Reverse Transcripase control:用以评估逆转录反应中有无基因组DNA的污染。在逆转录反应中仅仅不含有逆转录酶。

    常见问题及处理:
    问题 可能原因 推荐的解决方法
    无扩增曲线且无扩增产物(凝胶电泳) 反应体系中有PCR反应抑制剂 更换或纯化模板DNA。
    引物设计不合理 重新设计、合成引物。
    逆转录产物体积过量 减少逆转录产物量以不超过反应体系的10%。
    加样错误或有试剂未加 检查是否加了所有的所需试剂。
    引物的降解 通过PAGE电泳检测引物完整性。
    退火温度不正确 优化退火温度。
    无扩增曲线但有扩增产物(凝胶电泳) qPCR仪设置不正确 检查dye selction,reference dye是否选择正确
    失效的荧光检测 荧光检测应在PCR循环的退火/延伸阶段。
    荧光PCR仪问题 参考qPCR仪器说明书
    阴性对照(NTC)有扩增曲线
    反应体系中有污染 qPCR片段较小,极易造成环境中气溶胶污染。如果融解曲线分析,解链温度和目的片段相同,凝胶电泳中NTC中的片段大小和目的片段相同,极有可能是反应体系中某一或某些试剂污染所引起的。建议换至没有污染源的环境进行PCR体系的配制。
    引物二聚体 进行溶解曲线分析,如果扩增曲线的解链温度小于80℃,凝胶电泳片段大小和目的片度不符。请重新设计引物。
    提高退火温度3℃。
    PCR效率高于110%(斜率>-3.1) 有非特异性扩增 溶解曲线分析非特异性扩增;优化引物设计
    PCR扩增效率低于90%(斜率<-3.6) 反应体系中有PCR反应抑制剂 更换或纯化模板DNA
    PCR扩增条件不合适引起扩增效率降低。 确认引物浓度。注意qPCR Master Mix是否失效。
    引物设计 重新设计引物,避免扩增区域的DNA二级结构。
    实时荧光曲线线性不好 模板DNA含量较低或过高 应调整样品的DNA浓度。
    模板DNA中含有抑制PCR扩增反应的物质 对模板DNA进行纯化或更换模板。
    质量不好的逆转录试剂盒合成的cDNA,逆转录反应液中所含的物质可能抑制PCR反应。 请降低样品浓度,或将样品纯化后再进行反应。建议使用品牌质量较好的cDNA合成逆转录试剂盒。
    CT值高于预期值 加入的模板量太少 适当增加模板量。
    样品被降解 检查样品的完整性。
    引物不合适 重新设计合成引物。
    CT值低于预期值 加入了过多的模板 减少模板量。
    PCR产物太长 一般采用100-150bp的产物长度,一般不超过500bp
    CT值的标准差>0.16 取样不准确 每种样品的反应混合液单独配制,充分混匀;
    qPCR之前要离心,管壁不要沾有反应液。
    ΔRn值太小 PCR效率太低 优化PCR反应条件。
    目标模板数太低 增加模板量。
    扩增曲线的荧光信号弱,或扩增曲线呈锯齿状 ROX添加量太大 使请根据ROX使用方法和使用的PCR仪进行确定ROX的添加量。
    荧光校正错误 请联*(代"系")PCR仪器工程师或参照PCR仪器的使用说明书,进行本底和荧光校正。
    PCR的延伸时间过短即荧光读取时间不充分,荧光收集不能充分完成。 适当增加延伸时间。
    以少于PCR仪器标准条件的反应体积进行扩增,荧光收集量的误差会增大 应增加反应体积以满足PCR仪器标准。


    储存条件:-20℃,避免反复冻融,有效期半年。

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    ·Taq DNA聚合酶
    编号:RFT102
    英文名称:Taq DNA Polymerase
    规格:500U(100μl)|5×500U(5×100μl)|2000U(400μl)|5×2000 U(5×400μl)
    本品是从克隆有Thermu aquaticus DNA Polymerase基因的大肠杆菌经诱导表达后分离纯化的,其分子量为94 KD。具有5’-3’DNA聚合酶活性和5’-3’外切核酸酶活性,无3’-5’外切酶活性。在PCR反应中,Taq DNA Polymerase延伸速度为1-2 kb/分钟,产物3’端带A,可直接用TA载体克隆。一般用于DNA片段的PCR扩增、DNA标记、引物延伸、序列测定、平末端加A等,产物可以直接用于T/A载体克隆。本品浓度为5 U/μl。

    活性定义:1单位(U) Taq DNA Polymerase活力定义为在74℃、30分钟内,以活性化的大马哈鱼精子DNA作为模板/引物,将10 nmol脱氧核苷酸掺入到酸不溶物质所需的酶量。

    10×Taq Buffer:200 mM Tris-HCl (pH 8.4);200 mMKCl;15 mMMgCl2; 其它成分。

    贮存溶液:20 mM Tris-HCl (pH 8.0);0.1 mMEDTA;1 mMDTT;100 mMKCl ; Stabilizers; 50% glycerol

    反应举例:
    注意:以下举例为常规PCR反应系统,仅供参考。实际反应条件因模板、引物等的结构不同而各异,需根据模板、目的片段的大小、碱基序列和引物长短等具体情况,设定最佳反应条件。

    以人基因组DNA为模板,扩增1 kb的片段
    1、反应体系的建立:50 ml反应体系如下(可根据比例放大或缩小反应体系):
    Template <1μg
    Primer 1(10μM) 1μl
    Primer 2(10μM) 1μl
    10×Taq Buffer 5μl
    dNTP Mixture(10mM) 1μl
    Taq (5 U/μl) 0.5μl
    ddH2O 补至 50μl

    2、PCR反应循环的设置:
    94℃ 3min
    94℃ 30sec
    55℃ 30sec 30cycles
    72℃ 1min
    72℃ 5min
    3、结果检测:反应结束后取5 ml反应产物,琼脂糖凝胶电泳检测。

    储存条件:-20℃,有效期一年。



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