北京现货乙型流感病毒荧光PCR检测试剂盒供应

特别声明：本产品及我公司所售其他产品均为科研类试剂产品，严禁用于药物、医疗及其他非科研用途。

北京百奥莱博致力于最快速、最有效的检测产品，包括北京现货乙型流感病毒荧光PCR检测试剂盒供应在内的病毒PCR检测试剂盒产品是我公司倾力打造的优势产品，欢迎选购。

名称：北京现货乙型流感病毒荧光PCR检测试剂盒供应
编号：SYA163
规格：48次/盒
品牌：百奥莱博
等级：科研试剂

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·金黄色葡萄球菌肠毒素A(SEA)/B(SEB)双重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA057
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·肠出血性大肠杆菌(O104)单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA082
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·大豆特异性基因Lectin单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA274
等级：科研实验专用
规格：48次/盒
本试剂盒适用于检测植物中特异性基因Lectin，用于筛查待检测植物中是否含有Lectin基因片段DNA成分。其检测结果仅供参考。

本试剂盒用一对大豆特异性基因Lectin特异性引物，结合一条特异性荧光探针，用荧光PCR技术进行大豆特异性基因Lectin的检测。

试剂盒组成：

 

组份	数量	规格
Lectin反应液(Lectin-qPCR MIX)	1管	672μL/管
酶混合物(Enzymes MIX)	1管	48μL/管
阴性对照(NTC)	1管	50μL/管
Lectin阳性对照(Lectin-PTC)	1管	50μL/管

储存条件：-20℃，应避免反复冻融，有效期12个月。

使用方法：

一、样品采集及处理：
➤适用标本类型：植物组织及其加工制品。
➤样本采集：称取200g样品。

二、DNA提取：
样品需用粉碎机或冷冻研磨仪研磨至细粉末状。
用户可采用SN/T2584-2010中推荐的方法提取DNA，也可采购北京百奥莱博科技有限公司生产的植物基因组DNA提取试剂盒(过柱法)或其他合适的商业化产品，并按照相应试剂盒说明进行操作。
 注：阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取)，直接取5µL加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高，建议最后在样品制备区域加入阳性对照。

三、检测步骤：
1．PCR扩增
从试剂盒中取出荧光PCR反应液(Lectin-qPCR MIX)、酶混合物(Enzymes MIX)，室温融化并振荡混匀后，10000rpm离心10s。
设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照)，每个测试反应体系配制如下表：

试剂	每个反应加入的量	N个反应加入的量
荧光PCR反应液	14µL	N×14µL
酶混合物	1 µL	N×1µL
总量	15µL	N×15µL

计算好各试剂的使用量，加入一适当体积洁净离心管中，充分混匀，10000rpm离心10s，向设定的N个PCR反应管中分别加入15μL，向每管中加入处理后样品/阴性对照(NTC)/阳性对照(Lectin -PTC)5μL，10000rpm瞬时离心10秒。
2．qPCR反应条件
将各反应管放入实时荧光PCR仪器的反应槽内。推荐循环条件：

	1循环	50℃ for 2 min
预变性	1循环	95℃ for 10 min
PCR扩增	40循环	95℃ for 15 sec 60℃ for 60 sec

在60℃延伸时收集荧光信号。报告基团：设置为FAM，淬灭基团：NONE，请勿选择ROX参比荧光。

四、结果分析：
1．结果分析条件设定
直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整，以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
2．试验成立判定
➤阴性对照(NTC)：不应产生任何的扩增曲线。
➤阳性对照(Lectin -PTC)：均产生扩增曲线。
➤以上条件应同时满足，否则，此次试验视为无效。
3．结果判定
➤在试验成立的条件下，Ct值≤35的样本为阳性，表明Lectin核酸阳性。
➤Ct值显示为无的样本为阴性样本，表明Lectin核酸阴性。
➤如果35＜Ct值≤40，判为可疑样品。对于可疑样品，先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线，则为可疑阳性，否则判为阴性。
➤对于可疑阳性样品，重新抽提核酸，再次进行Lectin qPCR检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线，判为样本阳性，表明Lectin核酸阳性；否则判为样本阴性。

五、注意事项：
➤初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
➤所有使用的离心管应高压灭菌，而且必须不含DNA酶。
➤PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等)，防止实验室污染。
➤样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行，以免污染。
➤试剂盒里所有物品应视为污染物对待，按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。


北京现货乙型流感病毒荧光PCR检测试剂盒供应关键词：SYA163,百奥莱博,乙型流感病毒荧光PCR检测试剂盒


·口蹄疫(FMDV)通用型单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA500
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·立氏立克次体/莫氏立克次体双重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA139
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·勃氏考克氏体单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA134
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·猪细小病病毒(PPV)单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA423
等级：科研实验专用
规格：48次/盒|96次/盒

·EB病毒单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA144
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·冠状(Hcov)/副流感(PIV)/腺(ADV)病毒三重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA194
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·委内瑞拉马炎病毒单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA236
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·结核杆菌(TB)单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA488
等级：科研实验专用
规格：48次/盒|96次/盒
一、简介
本试剂盒用一对结核杆菌特异性引物，结合一条特异性探针，用荧光PCR技术对结核杆菌核酸进行体外扩增检测，用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。

二、用途
该试剂盒适合于检测外周血等样本中结核杆菌DNA，用于结核病等疾病的辅助诊断，其检测结果仅供临床参考。

三、试剂盒组成(40T/Kit)
组份 数量 规格
TB反应液(TB-qPCR MIX) 1管 560μL/管
核酸提取液(DNA Extraction) 2管 1.5mL/管
酶混合液(Enzymes MIX) 1管 40μL/管
阴性对照(NTC) 1管 50μL/管
TB阳性对照(TB-PTC) 1管 50μL/管

四、荧光PCR仪器适用范围：
ABI系列、MJ系列、Roche系列，博日系列及其他荧光定量PCR检测仪。

五、储存条件及有效期：
本试剂盒于-18℃以下保存，有效期为12个月。

六、样品采集、前处理与DNA提取
6.1 样品采集
6.1.1 适用标本类型：痰、支气管灌洗液、尿、粪、脑脊液或胸、腹水，其他肺外感染可取血、相应部位分泌液或组织细胞等。
6.1.2 标本采集
6.1.2.1 组织：取发病组织约1g，置入1.5mL洁净EP管，立即送检；
6.1.2.2 血液：无菌注射器抽取外周血1-2mL注入EDTA2Na(或柠檬酸*)抗凝管；
6.1.2.3 液体标本：取0.5-1mL左右，置入1.5ml洁净EP管，立即送检；
6.2 样本前处理：
6.2.1 脑脊液和胸、腹水：13000rpm离心3min沉淀集菌，去上清；
6.2.2 痰、支气管灌洗液、尿、粪等污染标本：经4%NaOH(痰和碱的比例为1:4，尿、支气管灌洗液和碱的比例为1:1)处理15min；尿标本加5%鞣酸、5%乙酸各0.5mL于锥形量筒内静置，处理后吸去上清，沉淀直接用于提取结核杆菌DNA或者经酸中和后接种培养，然后再对培养物提取DNA。
6.3 DNA提取
6.3.1 对上述处理好的样本加入40uL核酸提取液，100℃恒温处理10min，13000rpm离心5min，取上清液转移至新的1.5mL EP管，-20℃保存；
6.3.2 DNA的提取也可以采用商业化DNA提取试剂盒。
 注：阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取)，直接取4µL加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高，建议最后在样品制备区域加入阳性对照。

七、检测步骤：
7.1 试剂的准备
从试剂盒中取出荧光PCR反应液(TB-qPCR MIX)、酶混合液(Enzymes MIX)，冰上融化并振荡混匀后，10000rpm离心10s。
设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照)，每个测试反应体系配制如下表：
试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
荧光PCR反应液 14µL N×14µL
酶混合液 1µL N×1µL
总量 15µL N×15µL
计算好各试剂的使用量，加入一适当体积洁净离心管中，充分混匀，10000rpm离心10s，向设定的N个PCR反应管中分别加入21μL荧光PCR反应液，向每管中加入处理后样品/阴性对照(NTC)/阳性对照(TB-PTC)5μL，10000rpm瞬时离心10秒。
7.2 qPCR反应条件
将各反应管放入实时荧光PCR仪器的反应槽内。推荐循环条件:
1循环 50℃ for 2 min
预变性 1循环 95℃ for 10 min
PCR扩增 40循环 95℃ for 15 sec
60℃ for 60 sec
在60℃延伸时收集荧光信号。报告基团：设置为FAM。淬灭基团：NONE，请勿选择ROX参比荧光。

八、结果分析
8.1 结果分析条件设定
直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整，以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
8.2 试验成立判定
（1） 阴性对照(NTC)：不应产生任何的扩增曲线。
（2） 阳性对照(TB-PTC)：均产生扩增曲线。
（3） 以上条件应同时满足，否则，此次试验视为无效。
8.3 结果判定
（1） 在试验成立的条件下，Ct值≤35的样本为阳性，表明结核杆菌核酸阳性。
（2） Ct值显示为无的样本为阴性样本，表明结核杆菌核酸阴性。
（3） 如果35＜Ct值≤40，判为可疑样品。对于可疑样品，先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线，则为可疑阳性，否则判为阴性。
（4） 对于可疑阳性样品，重新抽提核酸，再次进行结核杆菌real time PCR检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线，判为样本阳性，表明结核杆菌核酸阳性；否则判为样本阴性。

九、注意事项：
（1） 初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
（2） 所有使用的离心管应高压灭菌，而且必须不含DNA酶。
（3） PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等)，防止实验室污染。
（4） 样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行，以免污染。
（5） 试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。



北京现货乙型流感病毒荧光PCR检测试剂盒供应关键词：SYA163,百奥莱博,乙型流感病毒荧光PCR检测试剂盒


·伤寒沙门菌单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA059
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·轮状病毒A/B分型双重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA220
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·冠状病毒(229E)单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA183
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·金黄色葡萄球菌肠毒素A单重荧光PCR检测试剂盒（定性/定量）
编号：SYA040
等级：科研实验专用
规格：48次/盒
一、简介：
本试剂盒用一对金黄色葡萄球菌肠毒素A特异性引物，对金黄色葡萄球菌肠毒素A DNA进行体外扩增检测，用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。

二、用途：
该试剂盒适合于检测水样粪便、疑似污染物的水、食物等样本中的金黄色葡萄球菌肠毒素A(SEA)，用于金黄色葡萄球菌肠毒素A(SEA)的辅助诊断，其检测结果仅供临床参考。

三、试剂盒组成：(48T)
组份 数量 规格
肠毒素A PCR反应液(SEA-PCR MIX) 1管 672μL/管
DNA抽提液(DNA Extraction) 2管 1.5mL/管
酶混合物(Enzymes MIX) 1管 48μL/管
阴性对照(NTC) 1管 50μL/管
肠毒素A阳性对照(SEA-PTC 107copies/μL) 1管 50μL/管
肠毒素A阳性对照(SEA-PTC 106copies/μL) 1管 50μL/管
肠毒素A阳性对照(SEA-PTC 105copies/μL) 1管 50μL/管
肠毒素A阳性对照(SEA-PTC 104copies/μL) 1管 50μL/管
肠毒素A阳性对照(SEA-PTC 103copies/μL) 1管 50μL/管

四、储存条件及有效期：
本试剂盒于-20℃以下保存，有效期为6个月。

五、PCR仪器适用范围
ABI系列，Roche系列等PCR检测仪等。

六、样品的采集与DNA提取
6.1 样品的采集
6.1.1 食品样品：样品的采集与预培养按照样品的采集与预培养按照《食品安全国家标准食品微生物学检验金黄色葡萄球菌检验》(GB 4789.10-2010)要求进行。
6.1.2 粪便样品：取粪便置于灭菌的收集管中送检。
6.1.3 病灶部位样品：取发病部位新鲜渗出物、粘液脓血送检。
 注：上述样品建议经过增菌后，收集培养物用于检测。
6.2 DNA提取
可采用PCR试剂盒配备的DNA抽提液，按以下说明进行DNA核酸的粗提。也可采购北京百奥莱博科技有限公司生产的DNA提取试剂盒(过柱法-荧光配套)或其他合适的商业化产品，并按照相应试剂盒说明进行操作。
6.2.1液体培养物：取液体培养物100μL加到1.5mL无菌离心管中，8000rpm离心3min，尽量吸弃上清，加入50μL DNA抽提液充分混匀，100℃恒温10min，13000rpm离心3min，取上清5μL进行PCR反应。
6.2.2固体培养物：挑取单克隆菌落与50μL DNA抽提液充分混匀，100℃恒温10min，13000rpm离心3min，取上清5μL进行PCR反应。
6.2.3 粪便样品：挑取米粒大小粪便于灭菌离心管中，加入0.5mL生理盐水，振荡混匀，13000rpm离心3分钟，弃上清，沉淀中加入50μL DNA抽提液充分混匀，100℃恒温10min，13000rpm离心3min取上清5μL进行PCR反应。
6.2.4 其他液体标本：取标本2-3mL，13000rpm离心3min，弃上清，沉淀中加入50μL DNA抽提液充分混匀，100℃恒温10min，13000rpm离心3min取上清5μL进行PCR反应。
 注：建议采用相关标准方法进行前增菌，并按照6.2.1方法进行提取。阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取)，直接取5µL加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高，建议最后在样品制备区域加入阳性对照。

七、检测步骤：
7.1 试剂的准备
从试剂盒中取出荧光qPCR反应液(SEA-qPCR MIX)、酶混合液(Enzymes MIX)，冰上融化并振荡混匀后，10000rpm离心10s。
设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照)，每个测试反应体系配制如下表：
试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
荧光PCR反应液 14µL N×14µL
酶混合液 1µL N×1µL
总量 15µL N×15µL
向设定的N个PCR反应管中分别加入15μL荧光PCR反应液，向每管中加入处理后样品/阴性对照(NTC)/阳性对照(SEA-PTC103、104、105、106、107copies/μL)5μL(建议由低浓度向高浓度顺序加入反应液，避免高浓度阳性对照品污染反应液)，10000rpm瞬时离心10秒。
7.2 qPCR反应条件
将各反应管放入实时荧光PCR仪器的反应槽内。
推荐循环条件:
1循环 50℃ for 2 min
预变性 1循环 95℃ for 10 min
PCR扩增 40循环 95℃ for 15 sec
60℃ for 60 sec
在60℃延伸时收集荧光信号。报告基团：设置为FAM，淬灭基团：NONE，请勿选择ROX参比荧光。

八、结果分析：
8.1 结果分析条件设定
直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整，以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
8.2 试验成立判定
（1） 阴性对照(NTC)：不应产生任何的扩增曲线。
（2） 阳性对照(SEA-PTC)：均产生扩增曲线。
（3） 以上条件应同时满足，否则，此次试验视为无效。
8.3 结果判定
（1） 在试验成立的条件下，Ct值≤35的样本为阳性，表明SEA核酸阳性。
（2） Ct值显示为无的样本为阴性样本，表明SEA核酸阴性。
（3） 如果35＜Ct值≤40，判为可疑样品。对于可疑样品，先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线，则为可疑阳性，否则判为阴性。
（4） 对于可疑阳性样品，重新抽提核酸，再次进行SEA qPCR检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线，判为样本阳性，表明SEA核酸阳性；否则判为样本阴性。
（5） 标准曲线相关系数数值介于0.97~1之间。(相关系数数值等同于r2值)，根据斜率及Y轴截距列出计算公式，并通过标准曲线计算样品RNA含量拷贝数。
例如：Y轴截距=41.5 斜率=-3.83
公式为：Y=-3.83(logX)+41.5

九、注意事项：
(1)初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
(2)所有使用的离心管应高压灭菌，而且必须不含DNA酶。
(3)PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等)，防止实验室污染。
(4)样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行，以免污染。
(5)试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。

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