
禽流感H7亚型实时荧光RT-PCR试剂盒
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- 大有泰莱
- 北京
- dy18002
- 2025年07月11日
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-20度保存
- 规格:
48T
禽流感病毒H7型检测试剂盒说明书20151201版
(Taqman探针一步法实时荧光RT-PCR)
编号:KA009.01YB
(Taqman探针一步法实时荧光RT-PCR)
编号:KA009.01YB
规格:48头份
介绍:禽流感(Avian influenza)是由A型流感病毒引起的一种人与动物共患病,不仅引起禽类以呼吸系统疾病、产蛋下降乃至急性致死和高死亡率等为特征的烈性传染病,而且可导致人的感染和死亡,严重威胁人类健康。禽流感病毒(Avian influenza virus ,AIV)最显著的生物学特征之一是亚型众多,变异频繁,按病原体类型的不同,可分为高致病性、低致病性和非致病性禽流感三大类。世界卫生组织(OIE)将其列为必须通报疾病。我国2008年修订的《一、二、三类动物疫病病种明录》将其列为一类动物疫病。
用途:该试剂盒用于对AIV H7亚型进行检测,有助于对AIV H7亚型的实验室诊断、监测和流行病调查。
原理:本试剂盒采用一步法实时荧光反转录聚合酶链式反应(One-Step Real Time RT-PCR) ,结合Taqman技术,对特异核酸进行定性或定量检测。
试剂盒的组成
| 试剂名称 | 数量 |
| AIV H7反应液 | 550μL×1管 |
| AIV H7酶 | 40μL×1管 |
| AIV H7引物探针 | 100μL×1管 |
| 无核酸水 | 1000μL×1管 |
| AIV H7阴性对照 | 1000μL×1管 |
| AIV H7阳性对照 | 150μL×1管 |
样品收集,操作和储存
1. 最好选择发病早期,无菌采样并立即送往实验室进行病毒检测。
2. 样品短期可在4℃冷藏保存,较长时间保存应在--20℃或者-70℃,并且避免反复冻融。
检测步骤
1.核酸提取
样品进行适当处理后,可采用本公司的核酸提取试剂盒,该试剂盒可用于对样本中病毒RNA的提取,请按照提取试剂盒说明书进行操作。也可选择其他合适的商品化产品。
2.扩增试剂的准备
将样品数+1份阴性对照+1份阳性对照设为N,计算试剂所需量,反应体系配制见下表
| 试剂名称 | N份用量(20μL 体系) |
| AIV H7反应液 | 10μL×(N+1) |
| AIV H7酶 | 0.5μL×(N+1) |
| AIV H7引物探针 | 1.8μL×(N+1) |
| 无核酸水 | 5.7μL×(N+1) |
3.加样
将制备好的样本,阴性对照,阳性对照各取2μL分别加入对应反应管中,加完后盖紧PCR反应管盖,置于PCR仪上。
4.荧光PCR扩增与信号收集
| 循环数 | 温度(℃) | 时间 | 数据收集位点 |
| 1 | 45 | 15min | - |
| 1 | 95 | 2min | - |
| 40 | 95 | 15s | - |
| 60 | 1min | 数据收集 |
注:报告基团选FAM,淬灭基团选NONE。
结果成立原则
阳性对照:CT值<30并有明显的扩增曲线。
阴性对照:无CT值或者CT值>37,线性为直线或者轻微斜线,无明显扩增曲线。
以上要求需同时满足,否则本次实验无效,需要重新进行。
结果判定
| CT值 | 样本检测结果 |
| <30并有明显的扩增曲线 | 阳性,样本中检测出AIV H7亚型。 |
| 30-37 | 可疑,需重复检测。若第二次检测CT值仍为30-37并有明显扩增曲线则判定为阳性,否则为阴性。 |
| >37并无扩增曲线 | 阴性,样本中未检测出AIV H7亚型。 |
1.反应体系应在特定配液区或者超净工作台中配制,整个实验过程严格控制污染。
2.PCR整个试验分配液区、模板提取区、扩增区。流程顺序为配液区→模板提取区→扩增区。严禁器材和试剂倒流。
3.使用不含荧光物质的一次性手套,一次性离心管。
4.反复冻融试剂将减低检测灵敏度,本试剂盒应在5次内用完.
5.-20℃保存的各试剂管使用前应在室温下完全融化,液体融化后需彻底混匀,2000 rpm离心15 s ,使用后立即放回-20 ℃。
6.在RNA提取过程中,避免RNA酶污染,尽量缩短操作时间。
7.注意防止试剂盒组分受污染。不要使用超过有效期限的试剂,试剂盒之间的成分不要混用。
8.PCR反应管避免气泡存在,管盖需盖紧。
9.不同批次的试剂盒勿混用。
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