- ￥90
- iCell（赛百慷）
- icell-0006
- 上海
- 2026年01月15日
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500ml
Ham's F-12是设计用于在无血清环境下培养CHO细胞的培养基。F-12除了作为CHO的无血清培养基之外，在添加血清后还被用于多种哺乳动物细胞的培养，例如作为软骨细胞和鼠前列腺上皮细胞的培养基使用。
| 1640基础培养基 | 1640 | iCell-0002 |
| 1640(含NaHCO3 1.5g/L)培养基 | 1640(含NaHCO3 1.5g/L) | iCell-128-0002 |
| 1640（无糖）基础培养基 | 1640（无糖） | iCell-138-0002 |
| 1640（无酚红）基础培养基 | 1640（无酚红） | iCell-148-0002 |
| MEM a 基础培养基 | MEM a | iCell-0003 |
| DMEM/F12基础培养基 | DMEM/F12 | iCell-0005 |
| DMEM/F12（无糖）基础培养基 | DMEM/F12（无糖） | iCell-138-0005 |
| DMEM/F12（无酚红）基础培养基 | DMEM/F12（无酚红） | iCell-148-0005 |
| F12基础培养基 | F12 | iCell-0006 |
| F12K基础培养基 | F12K | iCell-0007 |
| IMDM基础培养基 | IMDM | iCell-0008 |
| L15基础培养基 | L15 | iCell-0009 |
| M199基础培养基 | M199 | iCell-0010 |
| McCoy’s 5A基础培养基 | McCoy’s 5A | iCell-0011 |
| MEM基础培养基 | MEM | iCell-0012 |
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文献和实验培养细胞。 19、干细胞在更换外泌体专用间充质干细胞培养基的过程中，遇到干细胞生长缓慢，甚至死亡的现象，该如何处理？ 答：干细胞在更换培养基的过程中，对于培养环境比较敏感，尤其是从高营养环境（血清/HPL添加培养基）更换到低营养环境（化学成分确定培养基）的过程中会遇到干细胞生长缓慢，甚至死亡的现象，这些都是更换培养体系过程中经常遇到的问题。 解决方案 1：提高更换培养基时干细胞的融合度。细胞融合度从说明书中 20% 提高到50%-60% 时，然后更换外泌体专用间充质干细胞培养基，然后在细胞融合度 70%-80
/iPS细胞的长期培养提供了所需的优化ECM包被，并支持在多种无血清/无饲养层人ES/iPS扩增培养基（例如，mTeSR®、PluriSTEM™）中培养人ES/iPS细胞。以下是使用干细胞合格的ECM凝胶基质包被6孔板的一般指南。 所有操作程序均应在生物安全柜中的无菌条件下进行。 1.使用前一天，在2-8 °C冰箱中解冻ECM凝胶基质（CC131）。解冻后，将ECM凝胶始终置于冰上，并使用预先冷却的培养基和移液器，以避免产品凝胶化。 2.用冷的DMEM/F12（D6421）培养基稀释ECM凝胶
°C ）中进行。细胞培养基为生长培养基，细胞接种密度是 1-2 x 104 细胞每孔，接种于96孔E-Plates 中，并通过xCELLigence 系统进行过夜监测，直至细胞生长至接近满板，复孔检测。预先在另一普通96孔板中每孔中添加 2 µl 药物，并储存于 -20℃。待细胞培养 18-24 小时后，进行药物稀释反应。将药物融解，并添加 132 µl 检测缓冲液（1 x HBSS，Sigma H8264、20mM HEPES，Cellgro 25-060-Cl、0.1% BSA，Fisher
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