- ￥1250 - 3690
- LMAI Bio
- 3.125-200 U/mL
- 中国/美国/德国/日本
- LM-H2A-Ch
- 2025年07月12日
企业认证
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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存：
大量
- 供应商：
联迈生物
- 检测范围：
3.125-200 U/mL
- 检测方法：
酶联免疫ELISA法
- 应用：
科研实验
- 适应物种：
Chicken Gallus
- 样本：
血清、血浆及相关液体
- 规格：
48T/96T
1. 本试剂盒用于科学研究，非诊断试剂，不能用于临床诊断。
2. 请在本试剂盒标记的有效期内使用。
3. 试剂盒的试剂不能与其他批号的试剂或其他来源的试剂混合使用。
4. 如果样本值高于标准曲线最高浓度，请用检测缓冲液稀释样本，并重新检测。如果细胞培养上清样本需要较大的稀释倍数，请用细胞培养基进行适度稀释。
5. 任何标准品稀释、操作人员、移液技术、洗涤技术、孵育温度、保存时间的改变，都将影响结合反应。
6. 本试剂盒在设计上去除或降低了生物学样本中的一些内源性干扰因素，并非所有可能的影响因素都已去除。
试剂盒提供的材料： 详见说明书（可咨询索要）
【酶标板准备】
1. 包被：根据资料将捕获抗体包被至最终浓度，每孔中加入100μl的包被溶液，立即用封板膜封上酶标板，置于2-8℃过夜，让其发生结合过程。倒出孔中溶液，用 300 μl 的洗液洗涤一次，洗涤过程根据下面的洗涤步骤进行。
2. 封闭：每孔加入250μl检测缓冲液，室温孵育2小时，或者2 - 8℃封闭过夜。封闭后的酶标板可置于2-8℃贮存1个星期，或者-20℃贮存2个月。封闭后的酶标板若要立即使用，请先洗涤两次，然后加入样本。
【洗板步骤】 撕掉封板膜、弃掉孔中液体，每孔加入约300μl的洗液，洗涤6次。每次洗完都要彻底移除孔中溶液。条件允许的话，加入洗液后最好300转/分钟振荡60秒，注意请勿接触酶标板的表面。每次洗涤，在吸水纸上拍干多余的洗液，洗板完成后请立即使用酶标板，或者颠倒置于湿的吸水纸上不得超过 15 分钟，不要让酶标板干燥。
【显色底物】
每孔加入100μl的显色底物。
【终止液】
每孔快速加入100μl终止液终止酶活反应。为了完全抑制酶活，终止液要均匀地覆盖微孔。加入终止液后，须立即读数，或者置于黑暗中2-8℃1个小时。测定450nm最大吸收波长和570nm 或630nm参考波长下样本和标准品的OD值。
细胞培养上清
300 g 离心 10 分钟去除沉淀物，即刻检测, 或者分装，-20℃以下贮存。
血清样本
分离管分离血清。在 1000 g 离心之前，使血样凝集 30 分钟。吸取血清样本之后即刻检测，或者分装，-20℃以下贮存
血浆样本
EDTA或肝素抗凝收集血浆样本。1000 g 离心 30 分钟收集样本。即刻检测，或分装，-20℃以下贮存。
辣根过氧化物酶标记的链霉亲和素稀释前充分混匀。
根据标准品和待测样本的数量，用 1×检测缓冲液按 1：100 稀释浓缩的辣根过氧化物酶标记的链霉亲和素。
血清/血浆样本标准曲线的制作：
取 150 μl 浓缩的标准品，加入 150 μl 标准品稀释液，作为标准曲线的最高浓度 (1000pg/ml)。在每一个试管中加入 150 μl 标准品稀释液。使用高浓度标准品做 1：1 系列稀释。每次移液时，请确保充分混匀。以标准品稀释液作为标准曲线的零浓度。
细胞培养上清样本标准曲线的制作：
取 150 μl 浓缩的标准品，加入 150 μl 细胞培养基，作为标准曲线的最高浓度 (1000pg/ml)。在每一个试管中加入 150 μl 细胞培养基。使用高浓度标准品做 1：1 系列稀释。每次移液时，确保充分混匀。以细胞培养基作为标准曲线的零浓度。
检测步骤:检测之前请将所有的试剂、样本平衡至室温。
结果计算
计算标准品和样本的平均 OD 值，然后减去零浓度标准品的 OD 值。
以标准品浓度为横坐标，OD 值为纵坐标，用计算机软件进行回归拟合生成标准曲线。回归分析确定最佳拟合曲线。通过对浓度值和 OD 值取对数拟合，可以对标准曲线进行线性化。此过程可能可以得到更多样本的浓度，但数据的准确度会降低一些。
灵敏度
10个零标准品浓度 OD 的平均值加上两倍 SD，计算最低可检测浓度。
酶标板内精密度
3 个已知浓度的样本酶标板内重复测定 20 次，评估酶标板内的精密度。
酶标板间精密度
3 个已知浓度的样本酶标板间重复检测 6 次，评估酶标板间的精密度。
| 酶标板内精密度 | 酶标板间精密度 | |||||
| 样本 | 1 | 2 | 3 | 1 | 2 | 3 |
| 20 | 20 | 20 | 6 | 6 | 6 | |
| 平均值 (pg/ml) | 60.1 | 155.0 | 402.8 | 64.2 | 161.7 | 410.4 |
| 标准差 | 2.7 | 3.8 | 11.0 | 4.4 | 9.9 | 16.2 |
| 变异系数 (%) | 4.4 | 2.5 | 2.7 | 6.8 | 6.1 | 3.9 |
5 份健康血清加入 3 个不同浓度水平的试剂盒，未加的血清作为本底，计算回收率。回收率的范围从 81 %至 106 %，平均回收率为 93 %。
稀释线性
5 份健康血清加入高浓度的试剂盒，并在标准曲线的动力学范围内进行系列稀释，评估检测的线性。
| 平均值 (%) | 范围 (%) | |
| 1:2 | 102 | 99-110 |
| 1:4 | 97 | 95-102 |
| 1:8 | 94 | 88-99 |
| 1:16 | 95 | 85-102 |
应用本试剂盒，检测 30 份健康志愿者的血清样本，志愿者的用药史不详。
| 样本 类型 |
检测样本 数量 |
浓度范围 (pg/ml) |
可测百分率 (%) |
可测样本平均浓度 (pg/ml) |
| 血清 | 30 | n.d. | 0 | n.d. |
注意: 此样本值范围非生理值范围。健康人样本的浓度范围因地域、种族、样本制备以及检
测人员、设备的不同而有所不同。以上数据仅供参考。
特异性
本试剂盒识别天然和重组。下述因子以 1 ng/ml 稀释于标准品稀释液中，评估交叉反应活性。下述因子以 1 ng/ml 稀释于中等浓度的标准品中，评估干扰影响。没有观察到明显的交叉反应和干扰影响。
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文献和实验Dev Cell 封面文章：林鑫华团队揭示染色质重塑因子 Znhit1 在减数分裂启动中的核心作用
的缺失并不会影响精原干细胞的维持和分化。有趣的是，研究者发现，Znhit1 缺失不会影响减数分裂启动核心启动因子 Stra8 的表达，但是 Stra8 的靶基因（Meioc, Ythdc2, Sycp3 等）表达却发生了显著下调。 进一步研究表明，Znhit1 介导组蛋白变异体 H2A.Z 在减数分裂基因启动子区域的结合，协同转录因子 Stra8 发挥转录调控功能，共同激活包括 Meiosin 在内的减数分裂基因表达。组蛋白变异体 H2A.Z 主要富集在基因的启动子和增强子区域，H2A
的 相互作用，并充当效应蛋白的平台，导致下游级联事件。 磷酸化发生在所有核心组蛋白上，并且对每一个核心组蛋白都有不同的作用。组蛋白 H3 在丝氨酸 10 和 28 上的磷酸化，以及组蛋白 H2A 在 T120 上的磷酸化参与了染色质致密化以及有丝分裂过程中 染色质结构和功能的调节。这些是细胞周期和细胞生长的重要标志，在真核生物中得以保留。S139 处 H2AX 的磷酸化（产生 γH2AX）作为 DNA 损伤修复蛋白的招募点 (Lowndes et al., 2005, Pinto et al
)、DNA和少量RNA组成。组蛋白有H1、H2A、H2B、H3、H4五种。DNA包装时，由各两个H2A、H2B、H3、H4组成一个八聚体核小体，每个八聚体可缠绕146 bpDNA(称为核心DNA)。H1联系相邻的核小体，有利于DNA更高级的包装。重复的核小体结构加上连接DNA，通过组蛋白及其他非组蛋白进一步地折叠、压缩，形成高度有序的染色质结构。 在细胞生命活动的选择性基因沉默或基因表达过程中，包裹于染色质中的基因组DNA序列一般不发生改变，但细胞核内的染色质结构可以发生高度动态变化，使一些特定
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