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10×Tris-CAPS半干转电转移缓冲液KGP102Y

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  • KGP102Y
  • 2025年11月14日
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    • 保存条件

      室温

    • 保质期

      12个月

    • 供应商

      凯基生物

    • 规格

      100ml×2

    本产品作为蛋白电泳完毕后,将凝胶上蛋白电转移到 PVDF 膜或其它膜上的缓冲液,pH9.6,含 Tris-base、CAPS、甲醇, 不含有甘氨酸,本电泳缓冲液适合非连续蛋白电泳及半干转蛋白电泳。
    实验类型: 辅助试剂
    检测方法: Western Blot
    保存条件: 常温保存12个月

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    相关实验
    • Western Blot实验中转膜和封闭的注意事项

      电转移缓冲液通常用Tris glycine系统,如果是转膜后有部分样品要蛋白测序 ,最好用CAPS缓冲液,减少甘氨酸对测序的污染。 半干电转移(Semi-Dry)用经过缓冲液饱和的滤纸代替传统转移槽,非常节约试剂,而且效果也好。由于不用“泡”在缓冲液中,半干转不单可用均一缓冲体系,也可以做非均一转移缓冲体系(配方下面有,还可以加 20 % (v/v) 甲醇,据说有助于增加转膜效率和减少胶变形的,但据说也有可能影响抗体识别)。半干转可以在30分钟内完成转膜(每平方厘米电流2.5—

    • 增强化学发光法(ECL)

      影响转膜的。最后浸没入缓冲液里平衡。甲醇处理PVDF不要超过15秒。以后的步骤中不要让膜干涸了。 6. 电转移缓冲液通常用Tris glycine系统,如果是转膜后有部分样品要蛋白测序,最好用CAPS缓冲液,减少甘氨酸对测序的污染。 7. 半干电转移(Semi-Dry)用经过缓冲液饱和的滤纸代替传统转移槽,非常节约试剂,而且效果也好。由于不用“泡”在缓冲液中,半干转不单可用均一缓冲体系,也可以做非均一转移缓冲体系。半干转可以在30分钟内完成转膜(每平方厘米电流2.5-3.5mA,恒流

    • 百奇生物的Western-Blotting方法

      1. 溶液准备:转印缓冲液:0.025M Tris base , 0.192 M甘氨酸 , 30%甲醇10×TBST:250mM Tris-HCl ( pH 8.0 ) , 1.25M NaCl , 0.5%Tween20封闭液:1×TBST , 3%脱脂奶粉洗涤液:1×TBST2. 实验程序:A. 膜的准备:将PVDF膜切成条浸在甲醇中,室温条件下在摇床上摇1min,去除甲醇后加入1×TBST备用。B. 膜转印:1. 细胞或组织裂解进行SDS-PAGE电泳2. 用夹心法转至PVDF

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