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- 文献和实验
- 技术资料
- 保存条件：
室温,12个月
- 库存：
大量供应
- 供应商：
上海研谨生物
- 规格：
100T
| 货号 | 产品名称 | 英文名称 | CAS号 | 特性 |
| R21115-100T | 溴化乙锭清除液 | |||
| R22214-10ml | 溴化乙锭溶液(EB,10mg/ml,RNase free) | |||
| R20292-100T | 吖*啶橙/溴化乙锭双荧光染色试剂盒 |
溴化乙锭溶液(EB,1mg/ml)
介绍： 主要由溴化乙锭/EB和去离子水组成。
储存条件： RT,避光,24个月
用途： 高度灵敏的荧光染色剂,用于观察琼脂糖和聚丙烯*酰胺凝胶中的DNA
需要其它规格包装请联系咨询客服！
溴化乙锭清除液
产品简介：
溴化乙锭清除液 (EB Erasol)又称溴化乙锭清除剂或去除剂，是且用于清除溴化乙锭
(Ethidium Bromide)污染的产品。EB Erasol 能有效破坏溴化乙锭的分子结构、消除 EB 荧
光，减少对后续实验的影响，同时使 EB 致癌突变性降低 99%以上，保障科研人员和环境的
安全。EB Erasol 可以广泛用于清除各种缓冲液、有机溶液和固体表面的 EB 污染(玻璃、不
锈钢、塑料、地板、设备等)，处理实验室 EB污染区如电泳废水池、微波炉、凝胶系统附近
地方，地板等能彻底除掉 60 平米范围内的 EB污染，去除结果可检测。
EB Erasol 作用原理是通过与 EB 分子中的氨基反应和断开 EB分子中含氮杂
环而有效破坏 EB 的分子结构，达到去除 EB 污染的目的，且用于清除溶液和物体表面污染
的溴化乙锭。主要用于处理含 EB 污染的水、氯化铯溶液、电泳缓冲液(TAE、TBE、MOPS
等)、有机溶剂(异*丙醇、乙醇、异*戊醇、异*丁醇等)和受污染的多种物体表面(玻璃、塑料、不锈钢、地板、设备等)的 EB 污染。
产品组成：
| 试剂(A): EB Erasol A | 50ml | 100ml | RT | ||
| solution | 100ml | 200ml | RT | 避光 | |
自备材料：
1、饱和碳酸氢钠溶液
2、(可选)活性炭
操作步骤(仅供参考):
(一)清除水溶性溶液(如水、Tris、MOPS、氯化铯等)中的 EB
1、用水将需要清除的溶液稀释，使 EB 浓度低于 0.5mg/ml(如果 EB 浓度已经低于 1mg/ml，
则省略该稀释步骤)。
2、按试剂(A):试剂(B):水溶性溶液=1:2:100 的比例，将 A solution 和 B solution
先后加入到溶液中(由于溶液混合初期会产生少量有害气体，整个操作须在化学通风橱中小心操作)。3、搅拌 5min，室温静置 20～24h。
5、检查消除程度，弃液。
(二)清除氯化铯饱和的异丙醇中的 EB
1、用水将氯化铯饱和的异*丙醇溶液稀释，使 EB 浓度低于 1mg/ml(如果 EB 浓度已经低于1mg/ml，则省略该稀释步骤)。
2、按试剂(A):试剂(B) =1:2 的比例混合，即为 EB Erasol 工作液。
3、按氯化铯饱和的异丙醇溶液:EB Erasol 工作液=1:4 的比例，加入新鲜配制的 EBErasol工作液，室温搅拌 20h。
4、用饱和碳酸氢钠溶液中和使其 pH变为中性。
5、检查消除程度，弃液。
(三)清除异*戊醇和丁醇中的 EB
1、用水将异*戊醇和丁醇稀释，使 EB 浓度低于 1mg/ml(如果 EB 浓度已经低于 1mg/ml，则省略该稀释步骤)。
2、按试剂(A):E 试剂(B)=1:2 的比例混合，即为 EB Erasol工作液。
3、按溶液EB Erasol工作液:异*戊醇和丁醇=1:4的比例加入新鲜配制的 EB Erasol 工作液, 溶液分成两相，室温搅拌 72h。
4、按 2g 活性炭/100ml 混合液的比例加入活性炭，再搅拌 30min。5、检查消除程度，弃液。
注意事项：
1、 溶液在清除 EB过程中会产生少量有害气体，所以尽量在在化学通风橱中小心操作。
2、 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
有效期： 12个月有效。
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文献和实验的泳动率才与分子量的对数呈线性关系。因此要测定RNA分子量时，一定要用变性凝胶。在需快速检测所提总RNA样品完整性时，配制普通的1%琼脂糖凝胶即可。 三、实验材料、器具及药品 蘑菇的总RNA溶液。 电泳仪，电泳槽，电子天平，移液器，枪头，微波炉，紫外透射检测仪等。 琼脂糖，1XTAE电泳缓冲液，0.5μg/ml溴化乙锭(EB)10X载样缓冲液。 四、实验步骤 (1)用1×TAE电泳缓冲液制作琼脂糖凝胶，加1×TAE
，最好在4℃条件下电泳。 (5) 嵌入染料 荧光染料溴化乙锭用于检测琼脂糖凝胶中的DNA，染料嵌入到堆积的碱基对间并拉长线状和带缺口的环状DNA,使其刚性更强,还会使线状迁移率降低15%。 (6) 离子强度 电泳缓冲液的组成及其离子强度影响DNA电泳迁移率。在没有离子存在时(如误用蒸馏水配制凝胶，电导率最小，DNA几乎不移动，在高离子强度的缓冲液中(如误加10×电泳缓冲液)，则电导很高并明显产热，严重时会引起凝胶熔化。 对于天然的双链，常用的几种电泳缓冲液有TAE
糖电泳 （1）在100ml电泳缓冲液（1TAE或0.5TBE）中加入1g琼脂糖，加热熔化，注意观察，当心煮沸的液体溢出！当凝胶冷却至60℃左右时加入5ul溴化乙锭溶液（终浓度为1ug/ml），充分混匀。 （2）先用透明胶带封固胶托边缘，放好梳子，然后再倒入凝胶（凝胶厚度在5mm左右）。 （3）在凝胶完全凝固后（室温放置30～45分钟），小心移去梳子和透明胶带，将凝胶放入电泳槽中，加入电泳缓冲液（液面超过胶带约2～3mm）。 （4）取已制备好的酶切DNA样品，加入1/5样品缓冲液，充分混匀。用移液器将样品小心
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