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- PAS糖原染色
- 2026年01月19日
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- 服务名称：
PAS糖原染色实验服务
- 提供商：
晶莱生物
- 规格：
样本
PAS糖原染色简介：
PAS染色又称过碘.酸雪夫染色，糖原染色；一般用来显示糖原和其他多糖物质。还可以观察肾小球基底膜、结肠杯状细胞中性黏液物质、阿米巴滋养体和霉菌的着色。
PAS糖原染色实验意义：
随着医学实验技术的发展，糖原染色应用的范围更加广泛，如用以证明与鉴别细胞内空泡状的性质，心肌病变及其他心血管疾病的诊断，糖原累积病诊断和研究，糖尿病的诊断和研究，用于某些肿瘤的诊断等，为临床诊断、分类和治疗提供了重要的依据。
实验步骤：
（1）石蜡切片脱蜡至水(细胞涂片，冰冻切片直接水洗)。
（2）蒸馏水洗。
（3）过碘.酸酒清夜10min。
（4）自来水冲洗10min。
（5）Schiff氏液10min。
（6）流水冲洗5min。
（7）用哈瑞苏木.精或迈耶苏木.精染核3min(细胞核染色过深可用盐酸酒精分化)。
（8）流水冲洗5min。
（9）常规脱水、透明、封固。
实验结果：
PAS阳性为红色；细胞核蓝色。
实验技巧：
（1）试剂均应低温保存，临用前半小时取出恢复室温。
（2）过碘.酸处理温度以不高于20℃为宜，室温高时，处理时间可适当缩短。Schiff染液染色时间可随温度调整，室温高可减少染色时间，冬季室温低，可延长至20分钟左右。
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样片参考：
细胞
植物
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文献和实验用高碘酸氧化多糖时，醛基被游离出来，而显Schiff 阳性反应，这种 Schiff 反应称为 PAS （ Peri- odic Acid Schiff ）反应。自 J.E.A.McManus （ 1946.1948 ）、 R.D.Hotchkiss （ 1948 ）以来，一直被用作为多糖的组织化学检测方法。将固定好的切片用水及酒精洗涤后以 0.5 ％ HIO 4处理，待充分洗去 HIO 4后，浸于 Schiff 试剂中，含多糖部位就被染成红色。此反应基于 1 ， 2- 乙二醇
用 途 反应用来显示糖元和其它多糖物质操作步骤1、固定液用Carnoy液或75%酒精 Carnoy固定液: 纯酒精 60 ml 冰醋酸 10ml 氯仿 30ml2、染色液（1） 过碘酸酒清夜配法：过碘酸(HIO .2H O) 0.4g 95% 酒精 35ml M/5醋酸钠(2.72g+蒸馏水100ml) 5ml蒸馏水10ml保存于冰箱内,用棕色瓶,可用两周。（2） Schiff氏液：0.5克碱性品红加入100毫升蒸馏水中,时时摇动三角瓶5分钟,使之充分溶解.冷却至50℃后过滤,加入10
4. 标本运输：室温运输 5. 标本拒收的标准：溶血、稀释标本不能作测定 6. 试剂 6.1 试剂名称：血细胞PAS染色测定 6.2 试剂生产厂家：上海太阳生物技术公司 6.3 试剂组成 试剂1：PAS固定液，10％甲醛甲醇溶液。2℃-8℃避光保存，有效期六个月。 试剂2：PASⅠ液，10g/L（1％）过碘酸溶液。2℃
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